Szczegółowe wymagania dotyczące wytwarzania i jakości materiału siewnego.

Dziennik Ustaw

Dz.U.2007.29.189

Akt utracił moc

Wersja od: 16 października 2010 r.

ROZPORZĄDZENIE

MINISTRA ROLNICTWA I ROZWOJU WSI¹⁾

z dnia 1 lutego 2007 r.

w sprawie szczegółowych wymagań dotyczących wytwarzania i jakości materiału siewnego²⁾

Na podstawie art. 48 ust. 8 i art. 53 ustawy z dnia 26 czerwca 2003 r. o nasiennictwie (Dz. U. Nr 137, poz. 1299, z późn. zm.³⁾) zarządza się, co następuje:

§ 1.

Rozporządzenie określa:

Wytwarzany materiał siewny roślin zbożowych lub roślin pastewnych uznaje się za spełniający specjalne warunki dotyczące zawartości nasion Avena fatua (owsa głuchego), jeżeli:

Materiał siewny może być również uznany za spełniający specjalne warunki dotyczące zawartości nasion Avena fatua (owsa głuchego), jeżeli w urzędowym laboratorium nie stwierdzono obecności nasion Avena fatua (owsa głuchego) w pobranej z ocenianej partii materiału siewnego urzędowej próbie o masie nie mniejszej niż:

______

¹⁾ Minister Rolnictwa i Rozwoju Wsi kieruje działem administracji rządowej - rolnictwo, na podstawie § 1 ust. 2 pkt 1 rozporządzenia Prezesa Rady Ministrów z dnia 18 lipca 2006 r. w sprawie szczegółowego zakresu działania Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi (Dz. U. Nr 131, poz. 915).

²⁾ Przepisy niniejszego rozporządzenia wdrażają następujące przepisy Unii Europejskiej:

- dyrektywę Rady 2002/54/WE z dnia 13 czerwca 2002 r. w sprawie obrotu materiałem siewnym buraka (Dz. Urz. WE L 193 z 20.07.2002, str. 12, z późn. zm.; Dz. Urz. UE Polskie wydanie specjalne, rozdz. 3, t. 36, str. 292, z późn. zm.),

- dyrektywę Rady 66/401/EWG z dnia 14 czerwca 1966 r. w sprawie obrotu materiałem siewnym roślin pastewnych (Dz. Urz. WE L 125 z 11.07.1966, str. 2298, z późn. zm.; Dz. Urz. UE Polskie wydanie specjalne, rozdz. 3, t. 1, str. 55, z późn. zm.),

- dyrektywę Rady 66/402/EWG z dnia 14 czerwca 1966 r. w sprawie obrotu materiałem siewnym roślin zbożowych (Dz. Urz. WE L 125 z 11.07.1966, str. 2309, z późn. zm.; Dz. Urz. UE Polskie wydanie specjalne, rozdz. 3, t. 1, str. 66, z późn. zm.),

- dyrektywę Rady 2002/56/WE z dnia 13 czerwca 2002 r. w sprawie obrotu sadzeniakami ziemniaka (Dz. Urz. WE L 193 z 20.07.2002, str. 60, z późn. zm.; Dz. Urz. UE Polskie wydanie specjalne, rozdz. 3, t. 36, str. 340, z późn. zm.),

- dyrektywę Rady 2002/68/WE z dnia 19 lipca 2002 r. zmieniającą dyrektywę 2002/57/WE w sprawie obrotu materiałem siewnym roślin oleistych i włóknistych (Dz. Urz. WE L 193 z 20.07.2002, str. 32, z późn. zm.; Dz. Urz. UE Polskie wydanie specjalne, rozdz. 3, t. 36, str. 354, z późn. zm.),

- dyrektywę Rady 2002/55/WE z dnia 13 czerwca 2002 r. w sprawie obrotu materiałem siewnym warzyw (Dz. Urz. WE L 193 z 20.07.2002, str. 33, z późn. zm.; Dz. Urz. UE Polskie wydanie specjalne, rozdz. 3, t. 36, str. 313, z późn. zm.),

- dyrektywę Rady 68/193/EWG z dnia 9 kwietnia 1968 r. zmienioną dyrektywą 2002/11/WE w sprawie wprowadzania do obrotu materiału do wegetatywnego rozmnażania winorośli (Dz. Urz. WE L 93 z 17.04.1968, str. 15, z późn. zm; Dz. Urz. UE Polskie wydanie specjalne, rozdz. 3, t. 1, str. 123, z późn. zm.),

- dyrektywę Rady 98/56/WE z dnia 20 lipca 1998 r. w sprawie obrotu materiałem rozmnożeniowym roślin ozdobnych (Dz. Urz. WE L 226 z 13.08.1998, str. 16, z późn. zm.; Dz. Urz. UE Polskie wydanie specjalne, rozdz. 3, t. 23, str. 363, z późn. zm.),

- dyrektywę Rady 92/33/EWG z dnia 28 kwietnia 1992 r. w sprawie obrotu materiałem rozmnożeniowym oraz nasadzeniowym warzyw innym niż nasiona (Dz. Urz. WE L 157 z 10.06.1992, str. 1, z późn. zm.; Dz. Urz. UE Polskie wydanie specjalne, rozdz. 3, t. 12, str. 275, z późn. zm.),

- dyrektywę Rady 92/34/EWG z dnia 28 kwietnia 1992 r. w sprawie obrotu materiałem rozmnożeniowym roślin owocowych oraz roślinami owocowymi przeznaczonymi do produkcji owoców (Dz. Urz. WE L 157 z 10.06.1992, str. 10, z późn. zm.; Dz. Urz. UE Polskie wydanie specjalne, rozdz. 3, t. 12, str. 284, z późn. zm.),

- dyrektywę Komisji 74/268/EWG z dnia 2 maja 1974 r. ustanawiającą specjalne warunki dotyczące obecności Avena fatua w roślinach pastewnych i materiale siewnym roślin zbożowych (Dz. Urz. WE L 141 z 24.05.1974, str.19; Dz. Urz. UE Polskie wydanie specjalne, rozdz. 3, t. 2, str. 45),

- dyrektywę Komisji 2006/47/WE z dnia 23 maja 2006 r. ustanawiającą specjalne warunki dotyczące obecności Avena fatua w materiale siewnym roślin zbożowych (Dz. Urz. UE L 136 z 24.05.2006, str. 18),

- dyrektywę Komisji 2006/55/WE z dnia 12 czerwca 2006 r. zmieniającą załącznik III do dyrektywy Rady 66/402/EWG w odniesieniu do maksymalnej wagi partii materiału siewnego zbóż (Dz. Urz. UE L 159 z 13.06.2006, str. 13).

³⁾ Zmiany wymienionej ustawy zostały ogłoszone w Dz. U. z 2004 r. Nr 96, poz. 959, Nr 173, poz. 1808 i Nr 273, poz. 2703, z 2005 r. Nr 175, poz. 1462 oraz z 2006 r. Nr 92, poz. 639 i Nr 126, poz. 877.

ZAŁĄCZNIK Nr 1

OPIS KATEGORII I STOPNI KWALIFIKACJI MATERIAŁU SIEWNEGO DLA POSZCZEGÓLNYCH GRUP ROŚLIN

Tabela 1. Kategorie i stopnie kwalifikacji materiału siewnego roślin rolniczych i warzywnych, z wyłączeniem sadzeniaków ziemniaka

Kategoria	Stopień kwalifikacji
Kategoria	Nazwa	Symbol	Opis
Elitarny	Przedbazowy¹⁾	PB/III	Materiał siewny, który: 1) został uznany w urzędowej ocenie jako spełniający wymagania dotyczące wytwarzania i jakości określone dla kategorii elitarny; 2) stanowi trzecie pokolenie poprzedzające materiał siewny kategorii kwalifikowany i został wytworzony przez hodowcę z materiału hodowcy; 3) może być przeznaczony: a) do wytwarzania materiału siewnego kategorii elitarny, w stopniu przedbazowy drugiego pokolenia (PB/II), poprzedzającego materiał siewny kategorii kwalifikowany albo b) do wytwarzania materiału siewnego kategorii elitarny w stopniu bazowy (B), albo c) przez hodowcę do wytwarzania materiału siewnego kategorii kwalifikowany.
	Przedbazowy¹⁾	PB/II	Materiał siewny, który: 1) został uznany w urzędowej ocenie jako spełniający wymagania dotyczące wytwarzania i jakości określone dla kategorii elitarny; 2) stanowi drugie pokolenie poprzedzające materiał siewny kategorii kwalifikowany i został wytworzony z materiału siewnego uznanego po urzędowej ocenie w stopniu PB/III albo został wytworzony przez hodowcę z materiału hodowcy; 3) może być przeznaczony do wytwarzania materiału siewnego kategorii elitarny w stopniu bazowy (B) albo 4) może być przeznaczony przez hodowcę do wytwarzania materiału siewnego kategorii kwalifikowany.
	Bazowy	B	Materiał siewny, który: 1) został uznany w urzędowej ocenie jako spełniający wymagania dotyczące wytwarzania i jakości określone dla kategorii elitarny; 2) został wytworzony z materiału siewnego uznanego po urzędowej ocenie w stopniu przedbazowy (PB/III albo PB/II) albo 3) został wytworzony przez hodowcę z materiału hodowcy, albo 4) w przypadku odmiany miejscowej wpisanej do krajowego rejestru został wytworzony przez zachowującego odmianę, zgodnie z działaniami zapewniającymi zachowanie właściwych cech tej odmiany; 5) w przypadku odmian innych niż mieszańcowe może być przeznaczony do produkcji materiału siewnego kategorii kwalifikowany; 6) w przypadku odmiany mieszańcowej może być przeznaczony do produkcji materiału siewnego tej odmiany jako jej składnik rodzicielski, którym w szczególności mogą być: a) linie wsobne - składniki mieszańca prostego, b) mieszaniec prosty - składnik mieszańca podwójnego, c) linia wsobna oraz mieszaniec prosty - składniki mieszańca trójliniowego, d) linia wsobna oraz odmiana ustalona lub mieszaniec prosty - składniki mieszańca top-cross, e) mieszaniec męskosterylny - składnik mateczny mieszańca, f) odmiany obcopylne - składniki mieszańca międzyodmianowego, g) inne formy składników rodzicielskich, z których wytwarzany jest materiał siewny odmian mieszańcowych.
Kwalifikowany	Pierwszego rozmnożenia	C/1	Materiał siewny, który: 1) został uznany w urzędowej ocenie lub w ocenie pod urzędowym nadzorem jako spełniający wymagania dla materiału siewnego kategorii kwalifikowany pierwszego rozmnożenia (C/1); 2) został wytworzony z materiału siewnego kategorii elitarny stopnia bazowy (B) albo 3) został wytworzony przez hodowcę z materiału siewnego kategorii elitarny, stopnia przedbazowy (PB/III albo PB/II), albo 4) został wytworzony poprzez bezpośrednie krzyżowanie składników rodzicielskich odmiany mieszańcowej i jest przeznaczony na cele inne niż produkcja materiału siewnego; 5) może być przeznaczony do produkcji materiału siewnego kategorii kwalifikowany drugiego rozmnożenia (C/2).
	Drugiego rozmnożenia	C/2	Materiał siewny, który: 1) został uznany w urzędowej ocenie lub w ocenie pod urzędowym nadzorem jako spełniający wymagania dla materiału siewnego kategorii kwalifikowany drugiego rozmnożenia (C/2); 2) został wytworzony z materiału siewnego kategorii kwalifikowany pierwszego rozmnożenia (C/1) oraz 3) jest przeznaczony na cele inne niż produkcja materiału siewnego albo 4) dla określonych gatunków jest przeznaczony do produkcji materiału siewnego kategorii kwalifikowany trzeciego rozmnożenia (C/3).
	Trzeciego rozmnożenia	C/3	Materiał siewny, który: 1) został uznany w urzędowej ocenie lub w ocenie pod urzędowym nadzorem jako spełniający wymagania dla materiału siewnego kategorii kwalifikowany trzeciego rozmnożenia (C/3); 2) został wytworzony z materiału siewnego kategorii kwalifikowany drugiego rozmnożenia (C/2) i jest przeznaczony wyłącznie na cele inne niż produkcja materiału siewnego.
Standard		ST	Materiał siewny roślin warzywnych odmian własnych hodowcy, który: 1) został wytworzony oraz oceniony przez hodowcę i na jego odpowiedzialność zgodnie z działaniami zapewniającymi zachowanie właściwych cech odmiany; 2) spełnia wymagania dla materiału siewnego kategorii standard; 3) może być wytworzony z: a) materiału hodowcy albo b) materiału siewnego uznanego w urzędowej ocenie w kategorii elitarny albo kategorii kwalifikowany.
Handlowy		H	Materiał siewny określonych gatunków roślin rolniczych, którego: tożsamość gatunkowa oraz spełnienie wymagań jakościowych dla materiału siewnego kategorii handlowy zostały uznane w urzędowej ocenie lub ocenie pod urzędowym nadzorem.

Tabela 2. Kategorie i stopnie kwalifikacji materiału siewnego (sadzeniaków) ziemniaka

Kategoria	Stopień kwalifikacji
Kategoria	Nazwa	Symbol	Klasa	Opis
Elitarne	Przedbazowy	PB/M		Materiał siewny ziemniaka uzyskany w technologii mikrorozmnażania (minibulwy), który: 1) został wytworzony w celu wprowadzenia do obrotu; 2) został uznany po urzędowej ocenie jako spełniający wymagania w zakresie jakości i zdrowotności określone dla kategorii elitarny stopnia PB/M; 3) jest przeznaczony do wytwarzania materiału siewnego (sadzeniaków) ziemniaka kategorii elitarny w stopniu PB/III.
		PB/III		Sadzeniaki ziemniaka, które: 1) zostały uznane w urzędowej ocenie jako spełniające wymagania dotyczące wytwarzania, jakości i zdrowotności, określone dla kategorii elitarne w stopniu PB/III; 2) stanowią trzecie pokolenie poprzedzające sadzeniaki kategorii kwalifikowane i zostały wytworzone przez hodowcę z materiału hodowcy zgodnie z działaniami zapewniającymi określone warunki zdrowotności; 3) są przeznaczone do wytwarzania sadzeniaków kategorii elitarne niższych stopni (PB/II lub B) albo 4) są przeznaczone przez hodowcę do wytwarzania sadzeniaków kategorii kwalifikowane.
		PB/II		Sadzeniaki ziemniaka, które: 1) zostały uznane w urzędowej ocenie jako spełniające wymagania dotyczące wytwarzania, jakości i zdrowotności, określone dla kategorii elitarne stopnia PB/II; 2) stanowią drugie pokolenie poprzedzające sadzeniaki kategorii kwalifikowane i zostały wytworzone z sadzeniaków kategorii elitarne stopnia PB/III albo przez hodowcę z materiału hodowcy zgodnie z działaniami zapewniającymi określone warunki zdrowotności; 3) są przeznaczone do wytwarzania sadzeniaków kategorii elitarne stopnia B albo 4) są przeznaczone przez hodowcę do wytwarzania sadzeniaków kategorii kwalifikowane.
	Bazowy	B		Sadzeniaki ziemniaka, które: 1) stanowią pierwsze rozmnożenie poprzedzające sadzeniaki kategorii kwalifikowane i zostały wytworzone z sadzeniaków kategorii elitarne stopnia PB/II lub PB/III albo przez hodowcę z materiału hodowcy zgodnie z działaniami zapewniającymi określone warunki zdrowotności; 2) zostały uznane w urzędowej ocenie jako spełniające wymagania w zakresie wytwarzania, jakości i zdrowotności, określone dla kategorii elitarne stopnia bazowy klas, które:
			B/I	a) są przeznaczone do wytwarzania sadzeniaków kategorii kwalifikowane albo sadzeniaków klasy B/II, b) spełniają wymagania w zakresie wytwarzania, jakości i zdrowotności, określone dla kategorii elitarne stopnia bazowy klasy B/I,
			B/II	c) zostały wytworzone z sadzeniaków bazowych klasy B/I albo z sadzeniaków kategorii elitarne stopnia PB/II lub PB/III, d) spełniają wymagania w zakresie wytwarzania, jakości i zdrowotności, określone dla kategorii elitarne stopnia bazowy klasy B/II.
		C		Sadzeniaki ziemniaka, które: 1) zostały wytworzone bezpośrednio z sadzeniaków kategorii elitarne stopnia bazowy (B) albo przez hodowcę z sadzeniaków uznanych w urzędowej ocenie w kategorii elitarne w stopniu PB/III lub PB/II; 2) zostały uznane w urzędowej ocenie jako spełniające wymagania w zakresie wytwarzania, jakości i zdrowotności, określone dla kategorii kwalifikowane klas, które:
Kwalifikowane			C/A	a) są przeznaczone do celów innych niż produkcja sadzeniaków albo w obrębie stopnia do wytworzenia sadzeniaków kategorii kwalifikowane klasy C/B, b) spełniają wymagania w zakresie wytwarzania, jakości i zdrowotności, określone dla kategorii kwalifikowane klasy C/A,
			C/B	c) zostały uznane w urzędowej ocenie jako spełniające wymagania w zakresie wytwarzania, jakości i zdrowotności, określone dla kategorii kwalifikowane klasy C/B, d) są przeznaczone wyłącznie na cele inne niż produkcja sadzeniaków ziemniaka.

Tabela 3. Kategorie i stopnie kwalifikacji materiału szkółkarskiego roślin sadowniczych

Kategoria	Stopnie kwalifikacji
	nazwa stopnia i symbol		opis
	rośliny sadownicze (w tym winorośl)	agrest, malina, porzeczka, truskawka
Elitarny	przedbazowy (PB)	superelita (SE)	Materiał rozmnożeniowy, który: 1) został wytworzony zgodnie z działaniami zapewniającymi zachowanie właściwych cech tej odmiany oraz ochrony przed porażeniem chorobami i szkodnikami w warunkach kontrolowanych; 2) jest przeznaczony do produkcji materiału bazowego; 3) został uznany po urzędowej ocenie za spełniający wymagania szczegółowe.
	bazowy (B)	elita 1 (E1)	Materiał rozmnożeniowy, który: 1) został wytworzony zgodnie z działaniami zapewniającymi zachowanie właściwych cech tej odmiany oraz ochrony przed porażeniem chorobami i szkodnikami;
		elita 2 (E2)	2) jest przeznaczony do produkcji materiału kategorii kwalifikowany; w przypadku agrestu, maliny, porzeczek i truskawki jest to rozmnożenie dwukrotne; 3) został uznany po urzędowej ocenie za spełniający wymagania szczegółowe.
Kwalifikowany (C)		oryginał (O)	Materiał rozmnożeniowy, w szczególności zrazy, podkładki, nasiona, sadzonki oraz materiał nasadzeniowy, który: 1) został wytworzony z materiału kategorii elitarny; 2) jest przeznaczony do rozmnażania lub do nasadzeń owocujących; 3) został uznany po urzędowej ocenie za spełniający wymagania szczegółowe.

Objaśnienia

¹⁾ Materiał siewny roślin rolniczych w stopniu przedbazowy trzeciego rozmnożenia poprzedzającego materiał siewny kategorii kwalifikowany (PB/III) nie dotyczy gatunków o dużym współczynniku rozmnożenia należących do grup roślin:

a) zbożowych - gatunki z rodzaju Phalaris spp.,

b) pastewnych - gatunki: esparceta siewna, komonica zwyczajna, lucerna chmielowa, lucerna mieszańcowa, lucerna siewna; wszystkie gatunki traw oraz brukiew, facelia błękitna, kapusta pastewna i rzodkiew oleista,

c) oleistych i włóknistych - wszystkie gatunki,

d) burak cukrowy i pastewny,

e) warzywnych - wszystkie gatunki, z wyjątkiem bobu, fasoli zwykłej, fasoli wielokwiatowej oraz grochu łuskowego i cukrowego.

W przypadku gdy we wnioskach, w protokołach, świadectwach i informacjach dotyczących materiału siewnego przy symbolu stopnia nie będzie po ukośniku oznaczenia kolejności rozmnożenia lub w przypadku ziemniaka - klasy, przyjmuje się zawsze stopień najniższy określony dla gatunku (odpowiednio: PB/II, C/2 lub, jeśli dotyczy, C/3), a w przypadku sadzeniaków ziemniaka najniższą klasę w obrębie stopnia (odpowiednio: B/II lub C/B).

ZAŁĄCZNIK Nr 2

3 SZCZEGÓŁOWE WYMAGANIA DOTYCZĄCE WYTWARZANIA MATERIAŁU SIEWNEGO ROŚLIN ROLNICZYCH, Z WYŁĄCZENIEM ZIEMNIAKA, DLA POSZCZEGÓLNYCH GATUNKÓW LUB GRUP ROŚLIN

I.

Wymagania dotyczące wytwarzania materiału siewnego roślin zbożowych

1. Gatunki roślin zbożowych i najniższy obowiązujący stopień kwalifikacji:

Lp.	Nazwa polska	Nazwa łacińska	Najniższy stopień kwalifikacji¹⁾ dla poszczególnych gatunków
1	Jęczmień	Hordeum vulgare L.	C/2
2	Kukurydza²⁾	Zea mays L.	C/2
3	Mozga kanaryjska (kanar)	Phalaris canariensis L.	C/2
4	Owies	Avena sativa L.	C/2
5	Pszenica orkisz	Triticum spelta L.	C/2
6	Pszenica twarda	Triticum durum Desf.	C/2
7	Pszenica zwyczajna	Triticum aestivum L. emend. Fiori et Paol.	C/2
8	Pszenżyto	x Triticosecale Wittm.	C/2
9	Żyto	Secale cereale L.	C/1

Objaśnienia

¹⁾ Jeżeli w upoważnieniu dla podmiotu prowadzącego obrót materiałem siewnym hodowca nie ustalił wyższego stopnia kwalifikacji.

²⁾ Z wyłączeniem kukurydzy cukrowej (Zea mays var. saccharata Koke) i kukurydzy pękającej (Zea mays convar. microsperma Koem.).

2. Odmiany mieszańcowe:

1) materiał siewny składników rodzicielskich odmian mieszańcowych powinien być uznany w urzędowej ocenie jako spełniający wymagania dla materiału bazowego (B);

2) materiał siewny odmian mieszańcowych powinien być uznany w urzędowej ocenie lub ocenie pod urzędowym nadzorem jako spełniający wymagania dla materiału kwalifikowanego pierwszego rozmnożenia (C/1).

3. Ocena stanu plantacji

Liczba wymaganych ocen stanu plantacji dla poszczególnych gatunków	Termin dokonania oceny
dwie oceny stanu plantacji dla plantacji nasiennych:
- odmian ustalonych: wszystkich gatunków pszenic, pszenżyta, jęczmienia, żyta, owsa, mozgi kanaryjskiej i kukurydzy,
- składników rodzicielskich odmian mieszańcowych żyta, pszenic, samopylnego pszenżyta, jęczmienia i owsa,
- odmian mieszańcowych z wyłączeniem kukurydzy
pierwsza	w okresie poprzedzającym kwitnienie lub przed użyciem chemicznych czynników krzyżowania
druga	w okresie dojrzewania nasion
nie mniej niż trzy, a w przypadku wytwarzania składników rodzicielskich odmian mieszańcowych - cztery oceny stanu plantacji dla plantacji:
- odmian mieszańcowych kukurydzy oraz ich składników rodzicielskich
pierwsza	w okresie poprzedzającym kwitnienie
druga	w okresie kwitnienia składnika Rm, gdy 5 % roślin ma znamiona podatne do przyjęcia pyłku
trzecia	w okresie pełni kwitnienia do końca kwitnienia składników rodzicielskich
czwarta	w okresie od końca kwitnienia do początku dojrzewania nasion

4. Przedplon:

1) plantacje nasienne roślin zbożowych, z wyłączeniem kukurydzy, zakłada się na polu, na którym w ostatnim roku poprzedzającym rok założenia ocenianej plantacji nie były uprawiane rośliny wykluczające możliwość produkcji materiału siewnego danego gatunku, w szczególności innej odmiany tego samego gatunku lub tej samej odmiany, lecz niższego stopnia kwalifikacji, z uwzględnieniem specyfiki gatunku;

2) plantacje nasienne roślin zbożowych zakłada się na polu wolnym od roślin, które są samosiewami z poprzedniej uprawy.

5. Izolacja przestrzenna¹⁾

Lp.	Wyszczególnienie		Odległość w metrach nie mniejsza niż dla plantacji
			materiału elitarnego	materiału kwalifikowanego
1	Dla odmian ustalonych żyta, obcopylnych odmian pszenżyta oraz mozgi kanaryjskiej odległość od zasiewów innych odmian tego samego gatunku, a w przypadku pszenżyta od źródeł pyłku Triticum spp. i żyta		300	250
2	Dla odmian samopylnych pszenżyta odległość od innych zasiewów pszenżyta		50	20
3	Dla pszenic odległość od zasiewów pszenicy porażonej w silnym stopniu głownią pyłkową lub śniecią cuchnącą; dla owsa odległość od zasiewów owsa porażonych w silnym stopniu głownią pyłkową owsa; dla jęczmienia odległość od zasiewów jęczmienia porażonych w silnym stopniu głownią pyłkową lub głownią zwartą jęczmienia		50	20
4	Dla jęczmienia ozimego odległość od plantacji jęczmienia ozimego o innej rzędowości		100	50
5	Dla składników żeńskich odmian mieszańcowych pszenic, samopylnego pszenżyta, jęczmienia oraz owsa odległość od zasiewów wszystkich innych odmian tego samego gatunku, które nie są zapylaczem w wytwarzaniu odmiany mieszańcowej		25
6	Dla kukurydzy odległość plantacji, na której produkuje się nasiona:
	1)	składnika rodzicielskiego, od zasiewów innej odmiany lub formy kukurydzy niż ta, której pyłkiem mają być zapylone rośliny	300
	2)	odmian mieszańcowych, od zasiewów innej odmiany lub formy kukurydzy innej niż zapylacz danego mieszańca oraz odmian ustalonych	200
7	Dla żyta mieszańcowego odległość od plantacji innych odmian lub składników rodzicielskich, tego samego składnika rodzicielskiego, którego plantacja nie zachowuje minimalnych wymagań, innych gatunków, których pyłek może doprowadzić do zapłodnienia, na której produkuje się nasiona:
	1)	z zastosowaniem męskiej sterylności	1.000	500
	2)	bez zastosowania męskiej sterylności	600	500

Objaśnienia:

¹⁾ W przypadku pszenic, owsa i jęczmienia izolację przestrzenną może stanowić pas technologiczny o szerokości nie mniejszej niż 2 m, pod warunkiem że sąsiadująca plantacja tego samego gatunku nie jest porażona organizmami, o których mowa w lp. 3 tabeli.

6. Czystość odmianowa

Lp.	Gatunki	Minimalna czystość odmianowa w ocenie polowej dla
		materiału elitarnego	materiału kwalifikowanego
			I rozmnożenia	II rozmnożenia
Gatunki podlegające ocenie według norm procentowych (czystość określona w procentach)
1	Pszenice, jęczmień i owies	99,9	99,7	99,0
2	Samopylne odmiany pszenżyta	99,7	99,0	98,0
3	Każdy składnik odmian mieszańcowych owsa, jęczmienia i pszenic	99,7	90,0¹⁾
4	Każdy składnik odmian mieszańcowych samopylnego pszenżyta	99,0
Gatunki podlegające ocenie według norm powierzchni (czystość określona w sztukach na jednostce kwalifikacyjnej)
1	Dla odmian ustalonych i mieszańcowych żyta, ustalonych, obcopylnych odmian pszenżyta, mozgi kanaryjskiej oraz odmian ustalonych kukurydzy	1,0	1,0
2	1) Dla odmian mieszańcowych kukurydzy - liczba roślin, które są rozpoznawalne jako niebędące składnikiem rodzicielskim:
	a) w produkcji każdego ze składników rodzicielskich (Ro, Rm)	0,1
	b) w produkcji materiału siewnego odmian mieszańcowych - każdy składnik rodzicielski	0,2
	2) Gdy 5 % lub więcej roślin składnika matecznego ma znamiona zdolne do zapylenia, to procent roślin w obrębie tego składnika, który pylił lub pyli:
	a) w każdej ocenie stanu plantacji	1,0
	b) we wszystkich ocenach stanu plantacji łącznie	2,0
Minimalna skuteczność krzyżowania odmian mieszańcowych pszenic, jęczmienia, owsa i pszenżyta powinna wynosić nie mniej niż 95,0 %

Objaśnienie

¹⁾ Jest to czystość odmianowa odmian mieszańcowych pszenic, jęczmienia, owsa i samopylnego pszenżyta stwierdzona w następczej ocenie tożsamości.

7. Jednostki kwalifikacyjne

W ocenie polowej roślin zbożowych jednostką kwalifikacyjną jest powierzchnia:

1) dla metody oceny według norm powierzchni dla materiału kategorii:

a) elitarny - 30 m²,

b) kwalifikowany - 10 m²;

2) dla metody oceny według norm procentowych, dla wszystkich kategorii - 20 m²;

3) dla plantacji nasiennych kukurydzy - 100 kolejnych roślin w rzędzie.

8. Wymagania dodatkowe dla odmian mieszańcowych:

1) w następczej ocenie tożsamości składnika matecznego żyta mieszańcowego liczba roślin innego składnika nie może przekraczać - 6 sztuk na 1.000 roślin;

2) w produkcji materiału bazowego żyta mieszańcowego poziom sterylności składnika matecznego nie może być niższy niż - 98,0 %;

3) w materiale siewnym kategorii kwalifikowany, produkowanym jako mieszanina składników rodzicielskich, roślin składnika ojcowskiego nie uznaje się za zanieczyszczenie, jeżeli ich udział nie przekracza podanych przez hodowcę proporcji.

9. Czystość gatunkowa:

1) plantacje nasienne roślin zbożowych powinny być praktycznie wolne od gatunków innych niż uprawiany, szczególnie gatunków mogących stanowić źródło obcego pyłku;

2) występowanie innych gatunków roślin zbożowych na plantacjach nasiennych roślin zbożowych, na których produkowany jest materiał kategorii:

a) elitarny - nie więcej niż 0,2 rośliny na jednostce kwalifikacyjnej,

b) kwalifikowany - nie więcej niż 1 roślina na jednostce kwalifikacyjnej.

10. Zachwaszczenie:

1) plantacje nasienne roślin zbożowych powinny być praktycznie wolne od chwastów, w szczególności takich, których nasiona są trudne do usunięcia w procesie czyszczenia;

2) występowanie na plantacji chwastów w ilości powodującej ograniczenie wykształcenia nasion lub uniemożliwiającej przeprowadzenie oceny polowej może być podstawą do dyskwalifikacji plantacji;

3) na plantacjach nasiennych roślin zbożowych na 1 ha mogą wystąpić rośliny owsa głuchego¹⁾ w liczbie:

Plantacja zgłoszona do produkcji nasion kategorii	Pszenica	Jęczmień	Owies	Żyto, pszenżyto
elitarne	7	7	0	7
kwalifikowane	50	20	0	50

Objaśnienie

¹⁾ Dotyczy gatunków: Avena fatua i Avena sterilis łącznie.

11. Choroby i szkodniki:

1) występowanie na plantacji chorób i szkodników w ilości powodującej ograniczenie wykształcenia nasion lub uniemożliwiającej przeprowadzenie oceny polowej może być podstawą do dyskwalifikacji plantacji;

2) z plantacji wszystkich gatunków roślin zbożowych nie usuwa się roślin porażonych głownią;

3) w okresie dużej wrażliwości ocenianej plantacji na porażenie głownią uprawy roślin zbożowych w promieniu 50 m nie powinny zawierać średnio więcej niż 3 rośliny wytwarzające zarodniki głowni na jednostce powierzchni równej 30 m².

II.

Wymagania dotyczące wytwarzania materiału siewnego roślin pastewnych

1. Gatunki roślin pastewnych i obowiązujący najniższy stopień kwalifikacji:

1) rośliny strączkowe

Lp.	Nazwa polska	Nazwa łacińska	Najniższy stopień kwalifikacji¹⁾ dla poszczególnych gatunków
1	Bobik	Vicia faba L. (partim)	C/1
2	Groch siewny	Pisum sativum L. (partim)	C/2
3	Łubin biały	Lupinus albus L.	C/2
4	Łubin wąskolistny	Lupinus angustifolius L.	C/2
5	Łubin żółty	Lupinus luteus L.	C/2
6	Wyka kosmata	Vicia villosa Roth	C/2
7	Wyka siewna	Vicia sativa L.	C/2

2) rośliny motylkowate drobnonasienne

Lp.	Nazwa polska	Nazwa łacińska	Najniższy stopień kwalifikacji¹⁾ dla poszczególnych gatunków
1	Esparceta siewna	Onobrychis viciifolia Scop.	C/1
2	Komonica zwyczajna	Lotus corniculatus L.	C/1
3	Koniczyna biała	Trifolium repens L.	C/1
4	Koniczyna łąkowa (koniczyna czerwona)	Trifolium pratense L.	C/1
5	Koniczyna krwistoczerwona (inkarnatka)	Trifolium incarnatum L.	C/1
6	Koniczyna perska	Trifolium resupinatum L.	C/1
7	Koniczyna białoróżowa (koniczyna szwedzka)	Trifolium hybridum L.	C/1
8	Lucerna chmielowa	Medicago lupulina L.	C/2
9	Lucerna mieszańcowa	Medicago x varia T. Martyn	C/2
10	Lucerna siewna	Medicago sativa L.	C/2
11	Rutwica wschodnia	Galega orientalis Lam.	C/2

3) trawy

Lp.	Nazwa polska	Nazwa łacińska	Najniższy stopień kwalifikacji¹⁾ dla poszczególnych gatunków
1	Festulolium	Festuca spp. x Lolium spp.	C/1
2	Kostrzewa czerwona	Festuca rubra L.	C/1
3	Kostrzewa łąkowa	Festuca pratensis Huds.	C/1
4	Kostrzewa owcza	Festuca ovina L.	C/1
5	Kostrzewa trzcinowa	Festuca arundinacea Schreb.	C/1
6	Kupkówka pospolita	Dactylis glomerata L.	C/1
7	Mietlica biaława	Agrostis giganthea Roth	C/1
8	Mietlica pospolita	Agrostis capillaris L.	C/1
9	Mietlica psia	Agrostis canina L.	C/1
10	Mietlica rozłogowa	Agrostis stolonifera L.	C/1
11	Rajgras wyniosły (rajgras francuski)	Arrhenatherum elatius (L.) Beauv.	C/1
12	Stokłosa uniolowata	Bromus catharticus Vahl.	C/1
13	Tymotka kolankowata	Phleum bertolonii D.C.	C/1
14	Tymotka łąkowa	Phleum pratense L.	C/1
15	Wiechlina zwyczajna	Poa trivalis L.	C/1
16	Wiechlina błotna	Poa palustris L.	C/1
17	Wiechlina gajowa	Poa nemoralis L.	C/1
18	Wiechlina łąkowa	Poa pratensis L.	C/1
19	Wyczyniec łąkowy	Alopecurus pratensis L.	C/1
20	Życica mieszańcowa (rajgras oldenburski)	Lolium x boucheanum Kunth	C/1
21	Życica trwała (rajgras angielski)	Lolium perenne L.	C/1
22	Życica wielokwiatowa (rajgras włoski i rajgras holenderski)	Lolium multiflorum Lam.	C/1

4) inne rośliny rolnicze

Lp.	Nazwa polska	Nazwa łacińska	Najniższy stopień kwalifikacji¹⁾ dla poszczególnych gatunków
1	Brukiew	Brassica napus L. var. napobrassica (L.) Rchb.	C/1
2	Facelia błękitna	Phacelia tanacetifolia Benth.	C/1
3	Kapusta pastewna	Brassica oleracea L. convar. acephala (D.C.) Alef. var. medullosa Thell. var. viridis L.	C/1
4	Rzodkiew oleista	Raphanus sativus L. var. oleiformis Pers.	C/1

Objaśnienie

1) Jeżeli w upoważnieniu dla podmiotu prowadzącego obrót materiałem siewnym hodowca nie ustalił wyższego stopnia kwalifikacji.

2. Wymagania dotyczące oceny stanu plantacji przedplonu i izolacji przestrzennej:

1) ocena stanu plantacji

Rośliny strączkowe	Rośliny motylkowate drobnonasienne	Trawy	Inne rośliny rolnicze
jedna ocena stanu plantacji: w okresie od pełni kwitnienia roślin do początku zawiązywania	jedna ocena stanu plantacji: w okresie między pełnią kwitnienia a dojrzewaniem nasion	dwie oceny stanu plantacji: - pierwsza przed kwitnieniem;	1) dla roślin dwuletnich w pierwszym roku uprawy - jedna ocena w okresie wytwarzania wysadków;
strąków, a w przypadku łubinów przeprowadza się drugą ocenę w okresie zawiązywania strąków		- druga w okresie między pełnym wykłoszeniem a dojrzewaniem nasion	2) w drugim roku uprawy oraz dla roślin jednorocznych - jedna ocena w okresie od kwitnienia roślin do początku dojrzewania nasion;
			3) dla: kapusty pastewnej, brukwi pastewnej, uprawianych metodą bezwysadkową - dwie oceny stanu plantacji:
			a) pierwsza: w okresie formowania pędów kwiatostanowych, b) druga: w okresie od kwitnienia roślin do dojrzewania nasion
W przypadku roślin dwuletnich:
- z cyklem produkcji wysadków dokonuje się oceny cech zewnętrznych wysadków po ich przechowaniu, a przed wysadzeniem na plantacji, - materiał siewny może być wytwarzany metodą bezwysadkową wyłącznie z materiału siewnego uznanego w urzędowej ocenie w kategorii elitarny, z wyłączeniem kapusty pastewnej, - materiał siewny wytworzony metodą bezwysadkową uznaje się w najniższym stopniu kwalifikacji określonym dla gatunku

2) przedplon

Rośliny strączkowe

Rośliny motylkowate drobnonasienne

Trawy

Inne rośliny rolnicze

Plantacje nasienne roślin pastewnych zakłada się na polu, na którym w ostatnim roku lub kilku ostatnich latach poprzedzających rok założenia ocenianej plantacji nie były uprawiane rośliny wykluczające, uwzględniając specyfikację i wymagania szczegółowe roślin pastewnych, możliwość produkcji nasion danego gatunku, w szczególności innej odmiany lub tej samej odmiany, lecz niższego stopnia kwalifikacji. Pole dla tych plantacji powinno być praktycznie wolne od roślin, które są samosiewami z poprzedniej uprawy

Plantacje nasienne roślin strączkowych oraz motylkowatych drobnonasiennych nie mogą być zakładane na polu, na którym w ostatnich trzech latach uprawiano ten sam lub blisko spokrewniony gatunek roślin

Plantacje nasienne traw nie mogą być zakładane na polu, na którym w ostatnich dwóch latach uprawiano daną odmianę lub ostatnich trzech latach inną odmianę traw niezależnie od gatunku

Plantacje nasienne kapusty pastewnej nie mogą być zakładane na polu, na którym: 1) w ostatnich pięciu latach

uprawiano rośliny z rodzaju

Brassica;

2) w ostatnich trzech latach

uprawiano rośliny

pozostałych gatunków z

rodziny Brassicaceae;

3) w ostatnich dwóch latach

uprawiano buraki

3) izolacja przestrzenna

Rośliny strączkowe	Rośliny motylkowate drobnonasienne	Trawy¹⁾	Inne rośliny rolnicze
Dla plantacji bobiku: 1) o powierzchni do 2 ha: a) materiału elitarnego - 500 m, b) materiału kwalifikowanego - 100 m;	Od plantacji pylących w tym samym czasie, innych odmian, tej samej odmiany o słabym wyrównaniu, innych gatunków, w tym roślin dziko rosnących w rowach, na nasypach, łąkach oraz nieużytkach, których pyłek może prowadzić do zapylenia: 1) dla plantacji materiału elitarnego:		1) dla roślin z rodziny Brassicaceae wszystkich stopni kwalifikacji od plantacji innych odmian lub blisko spokrewnionych gatunków - 1.000 m;
2) o powierzchni powyżej 2 ha: a) materiału elitarnego - 100 m; b) materiału kwalifikowanego - 50 m.	a) o powierzchni do 2 ha - 200 m, b) o powierzchni większej niż 2 ha - 100 m; 2) dla plantacji materiału kwalifikowanego: a) o powierzchni do 2 ha - 100 m, b) o powierzchni większej niż 2 ha - 50 m		2) dla facelii błękitnej dla: a) materiału elitarnego - 400 m, b) materiału kwalifikowanego - 200 m;
Dla plantacji łubinu żółtego i wyki kosmatej dla: 1) materiału elitarnego - 200 m; 2) materiału kwalifikowanego - 100 m.			3) dla brukwi pastewnej dla wszystkich stopni kwalifikacji od innych plantacji nasiennych lub innych niż nasienne, na których występują pośpiechy - 200 m
Dla plantacji pozostałych gatunków obowiązuje pas technologiczny o szerokości nie mniejszej niż 2 m

Objaśnienie

¹⁾ W przypadku traw izolację przestrzenną ustala się z uwzględnieniem schematu krzyżowania się poszczególnych gatunków.

4) czystość odmianowa

Rośliny strączkowe

Rośliny motylkowate drobnonasienne

Trawy

Inne rośliny rolnicze

1) dla grochu i bobiku

minimalna czystość

odmianowa wynosi dla

materiału:

a) elitarnego - 99,7 %,

b) kwalifikowanego:

C/1 - 99,0 %,

C/2 - 98,0 %;

2) dla pozostałych gatunków

czystość odmianowa wynosi

dla materiału:

a) elitarnego

- 1 roślina/30 m²,

b) kwalifikowanego

- 1 roślina/10 m²

dla wszystkich gatunków czystość odmianowa wynosi dla materiału:

a) elitarnego

- 1 roślina/30 m²,

b) kwalifikowanego

- 1 roślina/10 m²

1) dla wiechliny łąkowej

minimalna czystość

odmianowa wynosi dla

materiału:

a) elitarnego

- 1 roślina/20 m²,

b) kwalifikowanego

- 4 rośliny/10 m²,

c) kwalifikowanego odmian

apomiktycznych,

jednoklonalnych

- 6 roślin/10 m²;

2) dla pozostałych gatunków

traw czystość odmianowa

wynosi dla materiału:

a) elitarnego

- 1 roślina/30 m²,

b) kwalifikowanego

- 1 roślina/10 m²

1) dla kapusty pastewnej

minimalna czystość

odmianowa wynosi dla

materiału:

a) elitarnego

- 99,7 %,

b) kwalifikowanego

- 99,0 %;

2) dla pozostałych gatunków

minimalna czystość

odmianowa wynosi dla

materiału:

a) elitarnego

- 1 roślina/30 m²,

b) kwalifikowanego

- 1 roślina/10 m²

5) czystość gatunkowa

Rośliny strączkowe

Rośliny motylkowate drobnonasienne

Trawy

Inne rośliny rolnicze

Plantacje nasienne roślin pastewnych powinny być praktycznie wolne od gatunków innych niż uprawiany;

dotyczy to szczególnie gatunków mogących doprowadzić do zapylenia obcym pyłkiem.

Występowanie roślin należących do innych gatunków, których nasiona są trudne do odróżnienia podczas badania laboratoryjnego od nasion odmiany uprawianej, powinno wynosić - 0,5 rośliny na jednostkę kwalifikacyjną.

Dla gatunków Lolium (życice) i Festuca spp. x Lolium spp. występowanie roślin innych gatunków życic nie może przekraczać w materiale:

a) elitarnym

- 1 roślina/50 m²,

b) kwalifikowanym

- 1 roślina/10 m²

6) zachwaszczenie

Rośliny strączkowe	Rośliny motylkowate drobnonasienne	Trawy	Inne rośliny rolnicze
Plantacje nasienne roślin pastewnych powinny być praktycznie wolne od chwastów, w szczególności takich, których nasiona są trudne do usunięcia w procesie czyszczenia.
Występowanie na plantacji chwastów w ilości powodującej ograniczenie wykształcenia nasion lub uniemożliwiającej przeprowadzenie oceny polowej może i być podstawą do dyskwalifikacji plantacji.

7) choroby i szkodniki

Rośliny strączkowe	Rośliny motylkowate drobnonasienne	Trawy	Inne rośliny rolnicze
Występowanie na plantacji chorób i szkodników w ilości powodującej ograniczenie wykształcenia nasion lub uniemożliwiającej przeprowadzenie oceny polowej może być podstawą do dyskwalifikacji plantacji
porażenie w szczególności chorobami grzybowymi z rodzaju Colletotrichum spp.	porażenie w szczególności chorobami zgorzelowymi, wirusowymi, zarazą, rakiem i rizoktoniozami

SCHEMAT KRZYŻOWANIA SIĘ GATUNKÓW ŻYCIC Z UWZGLĘDNIENIEM PLOIDALNOŚCI ODMIAN

		Życica trwała	Życica westerwoldzka	Życica wielokwiatowa	Życica mieszańcowa	Życica trwała	Życica westerwoldzka	Życica westerwoldzka	Życica wielokwiatowa	Życica mieszańcowa
		T	T	T	T	D	D	L	D	D
Życica trwała	T	+	+	+	+
Życica westerwoldzka	T	+	+	+	+
Życica wielokwiatowa	T	+	+	+	+
Życica mieszańcowa	T	+	+	+	+
Życica trwała	D					+	+	+	+	+
Życica westerwoldzka	D					+	+	+	+	+
Życica westerwoldzka	L					+	+	+	+	+
Życica wielokwiatowa	D					+	+	+	+	+
Życica mieszańcowa	D					+	+	+	+	+

+ - ryzyko przekrzyżowania - obowiązkowe zachowanie wymaganej izolacji

przestrzennej

T = odmiany tetraploidalne

D = odmiany diploidalne

L = odmiany podstawowe (ploidalność podstawowa)

SCHEMAT KRZYŻOWANIA SIĘ GATUNKÓW TRAW

Rajgras francuski

Kostrzewa łąkowa

Wiechlina zwyczajna

Wiechlina łąkowa¹⁾

Tymotka łąkowa

Kostrzewa czerwona

Kupkówka pospolita

Mietlica pospolita

Mietlica psia

Mietlica psia²⁾

Mietlica rozłogowa

Mietlica biaława

Wiechlina błotna

Wiechlina gajowa

Kostrzewa owcza³⁾

Kostrzewa owcza⁴⁾

Kostrzewa trzcinowa

Strzęplica nadobna

Życica trwała

Życica wielokwiatowa⁵⁾

Życica mieszańcowa

Rajgras francuski

Kostrzewa łąkowa

Wiechlina zwyczajna

Wiechlina łąkowa¹⁾

Tymotka łąkowa

Kostrzewa czerwona

Kupkówka pospolita

Mietlica pospolita

Mietlica psia

Mietlica psia²⁾

Mietlica rozłogowa

Mietlica biaława

Wiechlina błotna

Wiechlina gajowa

Kostrzewa owcza³⁾

Kostrzewa owcza⁴⁾

Kostrzewa trzcinowa

Strzęplica nadobna

Życica trwała

Życica wielokwiatowa⁵⁾

Życica mieszańcowa

+ - ryzyko przekrzyżowania - obowiązek zachowania wymaganej izolacji

przestrzennej

¹⁾ tylko odmiany apomiktyczne

²⁾ ssp. montana

³⁾ ssp. tenuifolia

⁴⁾ ssp. duriuscula

⁵⁾ dotyczy również westerwoldzkiej

Wykaz gatunków chwastów, których nasiona są trudne do usunięcia w procesie czyszczenia

Lp.	Rośliny pastewne - motylkowate drobnonasienne oraz trawy pastewne i gazonowe	Gatunki chwastów, które są trudne do odczyszczenia i od których plantacja nasienna powinna być praktycznie wolna
1	2	3
1	Esparceta siewna	Jaskier polny Rzodkiew świrzepa Przytulia czepna
2	Komonica zwyczajna	Babka lancetowata Bodziszek Głowieńka pospolita Komosa biała Lepnica rozdęta Przytulia czepna Szczaw polny zwyczajny i kędzierzawy Wyka czteronasienna
3	Koniczyna wszystkie gatunki uprawne	Babka lancetowata Bniec biały Głowieńka pospolita Gorczyca polna Mak polny Maruna bezwonna Nostrzyk żółty Fiołek polny Gwiazdnica pospolita Przytulia czepna Rumian pospolity Szczawik Komosa biała Kapusta polna Tobołki polne Chaber bławatek Chwastnica jednostronna Przytulia czepna Szczaw polny zwyczajny i kędzierzawy
4	Lucerna wszystkie gatunki uprawne	Babka lancetowata Bodziszek Chwastnica jednostronna Wyka, wszystkie gatunki Maruna bezwonna Rdest, wszystkie gatunki Rumian polny Rolnica pospolita Sporek polny Szczaw polny zwyczajny i kędzierzawy
5	Festulolium	Chaber bławatek Czerwiec roczny Iglica pospolita Jaskier polny Nostrzyk żółty Ostrożeń polny Perz właściwy Przytulia czepna Rdest, wszystkie gatunki Włośnica sina i zielona Szczaw polny zwyczajny i kędzierzawy Stokłosa, wszystkie gatunki Śmiałek darniowy
6	Kostrzewa wszystkie gatunki uprawne	Chaber bławatek Iglica pospolita Kłosówka wełnista Nostrzyk żółty Perz właściwy Rdest, wszystkie gatunki Rumianek Stokłosa żytnia, dachowa i miękka Tobołki polne Życica roczna Szczaw polny zwyczajny i kędzierzawy Śmiałek darniowy Wyczyniec, wszystkie gatunki
7	Kupkówka pospolita	Chaber bławatek Iglica pospolita Kłosówka wełnista Nostrzyk żółty Maruna bezwonna Perz właściwy Rdest, wszystkie gatunki Rumian polny Rumianek Stokłosa żytnia, dachowa i miękka Tobołki polne Życica roczna Szczaw polny zwyczajny i kędzierzawy Śmiałek darniowy
8	Mietlica wszystkie gatunki uprawne	Czerwiec roczny Gwiazdnica pospolita Kłosówka wełnista Krwawnik pospolity Mlecz, wszystkie gatunki Mniszek pospolity Rumian polny Maruna bezwonna Szczaw polny zwyczajny i kędzierzawy Starzec zwyczajny Tobołki polne Wiechlina roczna
9	Mozga trzcinowata	Owies głuchy Iglica pospolita Niezapominajka polna Nostrzyk żółty Rdest, wszystkie gatunki Perz właściwy Szczaw polny zwyczajny i kędzierzawy Śmiałek darniowy
10	Rajgras wyniosły (rajgras francuski, owsik wyniosły)	Owies głuchy Chaber bławatek Czerwiec roczny Iglica pospolita Kłosówka wełnista Perz właściwy Przytulia czepna Stokłosa dachowa i żytnia Szczaw polny zwyczajny i kędzierzawy Życica roczna Śmiałek darniowy
11	Stokłosa wszystkie gatunki uprawne	Owies głuchy Chaber bławatek Iglica pospolita Nostrzyk żółty Perz właściwy Przytulia czepna Stokłosa dachowa i żytnia Szczaw polny zwyczajny i kędzierzawy Wyczyniec, wszystkie gatunki Śmiałek darniowy
12	Tymotka wszystkie gatunki uprawne	Owies głuchy Fiołek polny Głowieńka pospolita Maruna bezwonna Niezapominajka polna Rdest, wszystkie gatunki Rumian polny Rumian pospolity Sporek polny Włośnica sina i zielona Szczaw polny zwyczajny i kędzierzawy Śmiałek darniowy
13	Wiechlina wszystkie gatunki uprawne	Owies głuchy Babka lancetowata Czerwiec roczny Gwiazdnica pospolita Kłosówka wełnista Krwawnik pospolity Miotła zbożowa Maruna bezwonna Mlecz, wszystkie gatunki Rumian polny Szczaw polny zwyczajny i kędzierzawy Tobołki polne
14	Wyczyniec łąkowy	Owies głuchy Chaber bławatek Mlecz, wszystkie gatunki Stokłosa dachowa i żytnia Wyczyniec polny, kolankowaty i czerwonożółty Szczaw polny zwyczajny i kędzierzawy
15	Życica wszystkie gatunki uprawne	Owies głuchy Chaber bławatek Czerwiec roczny Iglica pospolita Jaskier polny Nostrzyk żółty Ostrożeń polny Perz właściwy Przytulia czepna Włośnica sina i zielona Szczaw polny zwyczajny i kędzierzawy Stokłosa, wszystkie gatunki Śmiałek darniowy
16	Pozostałe gatunki traw	Chaber bławatek Czerwiec roczny Iglica pospolita Kłosówka wełnista Nostrzyk żółty Maruna bezwonna Ostrożeń polny Perz właściwy Rdest, wszystkie gatunki Rumian polny Rumianek pospolity i bezpromieniowy Stokłosa żytnia, dachowa i miękka Tobołki polne Życia roczna Szczaw polny zwyczajny i kędzierzawy Śmiałek darniowy

III.

Wymagania dotyczące wytwarzania materiału siewnego roślin oleistych i włóknistych

1. Gatunki roślin oleistych i włóknistych i obowiązujący najniższy stopień kwalifikacji

Lp.	Nazwa polska	Nazwa łacińska	Najniższy stopień kwalifikacji¹⁾ dla poszczególnych gatunków
1	Gorczyca biała	Sinapis alba L.	C/1
2	Gorczyca sarepska	Brassica juncea (L.) Czern. et Cosson	C/1
3	Kminek zwyczajny	Carum carvi L.	C/1
4	Konopie	Cannabis sativa L.	C/2
5	Len zwyczajny	Linum usitatissimum L.	C/3
6	Mak	Papaver somniferum L.	C/1
7	Rzepak	Brassica napus L. (partim)	C/1
8	Rzepik	Brassica rapa L. var. silvestris (Lam.) Briggs	C/1
9	Słonecznik	Helianthus annuus L.	C/1
10	Soja	Glycine max (L.) Merr.	C/1

Objaśnienie

¹⁾ Jeżeli w upoważnieniu dla podmiotu prowadzącego obrót materiałem siewnym hodowca nie ustalił wyższego stopnia kwalifikacji.

2. Odmiany mieszańcowe:

1) materiał siewny składników rodzicielskich odmian mieszańcowych powinien być uznany w urzędowej ocenie jako spełniający wymagania dla materiału bazowego (B);

3. Ocena stanu plantacji

Lp.	Liczba wymaganych ocen stanu plantacji dla poszczególnych gatunków	Termin dokonania oceny
1	jedna ocena stanu plantacji dla plantacji nasiennych:
	gorczycy sarepskiej i białej, odmian ustalonych rzepaku, rzepiku, konopi dwupiennych, soi, lnu, maku, kminku zwyczajnego i odmian ustalonych słonecznika	w okresie od pełni kwitnienia do początku zawiązywania nasion
2	dwie oceny stanu plantacji dla plantacji nasiennych:
	a) konopi jednopiennych:
	- pierwsza	po wykształceniu się osobników dwupiennych, ale przed rozpoczęciem kwitnienia osobników męskich (płaskoni)
	- druga	w trzy tygodnie po wykonaniu pierwszej oceny stanu plantacji
	b) odmian mieszańcowych słonecznika:
	- pierwsza	przed kwitnieniem w celu sprawdzenia izolacji przestrzennej
	- druga	w okresie dojrzewania koszyczków
3	trzy oceny stanu plantacji dla plantacji nasiennych odmian mieszańcowych rzepaku i męskosterylnych składników mieszańców złożonych:
	- pierwsza	wczesną wiosną, przed kwitnieniem
	- druga	w pełni kwitnienia
	- trzecia	po zakończeniu kwitnienia

4. Płodozmian

Plantacje nasienne roślin oleistych i włóknistych zakłada się na polu, na którym w ostatnim roku lub kilku ostatnich latach poprzedzających rok założenia ocenianej plantacji nie były uprawiane rośliny wykluczające, uwzględniając specyfikę i wymagania szczegółowe roślin oleistych i włóknistych, możliwość produkcji nasion danego gatunku, w szczególności innej odmiany lub tej samej odmiany, lecz niższego stopnia kwalifikacji. Pole dla tych plantacji powinno być praktycznie wolne od roślin, które są samosiewami z poprzedniej uprawy.
1	Plantacje nasienne rzepaku nie mogą być zakładane na polu, na którym uprawiano:
	1) dla podwójnie ulepszonych odmian rzepaku - inne odmiany rzepaku	w ostatnich pięciu latach
	2) inne rośliny gatunków z rodziny Brassicaceae	w ostatnich trzech latach
2	Plantacje nasienne kminku zwyczajnego nie mogą być zakładane na polu, na którym uprawiane były rośliny z rodziny Apiaceae	w ostatnich dwóch latach
3	Plantacje nasienne soi nie mogą być zakładane na polu, na którym uprawiano soję	w ostatnich trzech latach
4	Plantacje pozostałych gatunków roślin oleistych i włóknistych nie mogą być zakładane na polu, na którym w roku poprzedzającym rok założenia ocenianej plantacji uprawiany był ten sam gatunek. Pole dla plantacji nasiennych roślin oleistych i włóknistych powinno być wolne od roślin, które są samosiewami z poprzedniej uprawy.

5. Izolacja przestrzenna¹⁾

Lp.	Wyszczególnienie	Odległość nie mniejsza niż w metrach dla plantacji
Lp.	Wyszczególnienie	materiału elitarnego	materiału kwalifikowanego
1	Dla wszystkich gatunków z rodzaju Brassica spp. oprócz rzepaków, dla konopi, z wyjątkiem jednopiennych, oraz dla kminku, gorczycy białej	400	200
2	Dla odmian ustalonych rzepaku oraz rzepiku	200	100
3	Dla odmian mieszańcowych rzepaku	500	300
4	Dla konopi jednopiennych	5.000	1.000
5	Dla słonecznika:
	1) przy wytwarzaniu składników rodzicielskich mieszańca, w tym również mieszańca pojedynczego, jeśli stanowi składnik mieszańca potrójnego	1.500	-
	2) dla odmian innych niż mieszańcowe	750	500
6	Dla pozostałych gatunków roślin oleistych i włóknistych izolacji nie określa się

Objaśnienie

¹⁾ Dla gatunków samopylnych izolację przestrzenną może stanowić pas technologiczny o szerokości nie mniejszej niż 2 m, jeżeli sąsiadująca plantacja nie jest porażona organizmami szkodliwymi.

Jeżeli sąsiadująca plantacja nasienna jest zgłoszona do oceny w niższym stopniu kwalifikacji, traktowana jest jako źródło zapylenia obcym pyłkiem oraz porażenia przez organizmy szkodliwe.

6. Czystość odmianowa:

Lp.	Gatunki	Minimalna czystość odmianowa w ocenia polowej dla
		materiału elitarnego	materiału kwalifikowanego
			I rozmnożenia	II rozmnożenia
I. Gatunki podlegające ocenie według norm procentowych (czystość określona w procentach)
1	Dla soi	99,5	99,0
2	Dla gorczycy białej i odmian ustalonych słonecznika oraz dla rzepaku i rzepiku wytwarzanych na cele pastewne	99,7	99,0
3	Dla rzepaku i rzepiku wytwarzanych na cele inne niż pastewne	99,9	99,7
4	Dla lnu	99,7	98,0	97,5
5	Dla maku	99,0	98,0
II. Gatunki podlegające ocenie według norm powierzchni (czystość określona w sztukach roślin nietypowych dla odmiany, na jednostce kwalifikacyjnej)
1	Dla gorczycy sarepskiej, kminku, konopi	1,0	1,0
2	Dla słonecznika mieszańcowego - roślin, które są rozpoznawalne jako niebędące linią wsobną lub innym składnikiem rodzicielskim:
	1) w produkcji materiału siewnego kategorii elitarny składników rodzicielskich:
	a) linie wsobne	0,2
	b) mieszańce proste:
	- składnik męski, rośliny wydzielające pyłek, podczas gdy 2 % lub więcej osobników żeńskich ma podatne kwiaty	0,2
	- osobnik żeński	0,5
	2) w produkcji materiału siewnego kategorii kwalifikowany mieszańców F₁:
	a) składnik męski, rośliny wydzielające pyłek, podczas gdy 5 % lub więcej osobników żeńskich ma podatne kwiaty	0,5
	b) składnik żeński	1,0

1) w składniku matecznym poziom męskiej sterylności stwierdzony w następczej ocenie tożsamości powinien wynosić nie mniej niż:

a) dla rzepaku - 98,0 %,

b) dla słonecznika - 95,0 %;

2) dla odmian mieszańcowych słonecznika liczba roślin rozpoznawalnych jako niebędące linią wsobną lub innym składnikiem rodzicielskim nie może przekraczać:

a) w produkcji składników rodzicielskich (Ro, Rm):

- w składniku męskim, rośliny pylące, jeżeli co najmniej 2 % osobników żeńskich ma podatne kwiaty - 0,2 rośliny na jednostkę (0,2 %),

- w składniku żeńskim - 0,5 rośliny na jednostkę (0,5 %),

b) w produkcji materiału siewnego mieszańców handlowych linie wsobne i pojedyncze mieszańce stanowiące składniki rodzicielskie:

- w składniku męskim, rośliny pylące, jeżeli co najmniej 5 % osobników żeńskich ma podatne kwiaty - 0,5 rośliny na jednostkę (0,5 %),

- w składniku żeńskim - 1,0 roślina na jednostkę (1,0 %),

c) jeżeli co najmniej 5 % roślin składnika matecznego ma znamiona zdolne do zapylenia, to procent roślin w obrębie tego składnika, który pylił lub pyli, nie może przekraczać w każdej ocenie stanu plantacji - 0,5 rośliny na jednostkę (0,5 %);

3) występowanie roślin typowo męskich (płaskoni) w konopiach jednopiennych nie może przekraczać:

a) dla materiału elitarnego - 0,1 rośliny na 30 m²,

b) dla materiału kwalifikowanego - 15 roślin na 10 m².

Płaskonie występujące w ilości przekraczającej powyższe normy powinny być usuwane z plantacji wraz z korzeniami i niszczone przed rozpoczęciem pylenia.

7. Czystość gatunkowa:

1) plantacje nasienne roślin oleistych i włóknistych powinny być praktycznie wolne od gatunków innych niż uprawiany, szczególnie gatunków mogących stanowić źródło obcego pyłku;

2) na plantacjach nasiennych roślin oleistych i włóknistych może wystąpić nie więcej niż 0,2 rośliny innego gatunku uprawnego na jednostce kwalifikacyjnej.

8. Zachwaszczenie:

1) plantacje nasienne roślin oleistych i włóknistych powinny być praktycznie wolne od chwastów, w szczególności takich, których nasiona są trudne do usunięcia w procesie czyszczenia;

9. Choroby i szkodniki:

1) plantacje nasienne roślin oleistych i włóknistych powinny być praktycznie wolne od chorób i szkodników;

2) porażenie plantacji przez choroby i szkodniki w stopniu powodującym ograniczenie wykształcenia nasion lub uniemożliwiającym przeprowadzenie oceny polowej może być podstawą do dyskwalifikacji plantacji.

Wykaz gatunków, których nasiona są trudne do usunięcia w procesie czyszczenia

Lp.	Rośliny oleiste i włókniste	Gatunki chwastów, które są trudne do odczyszczenia i od których plantacja nasienna powinna być praktycznie wolna
1	Gorczyca biała Gorczyca sarepska	Lebiodka pospolita Przytulia czepna Rdest, wszystkie gatunki Tobołki polne Tasznik pospolity Wyka, wszystkie gatunki	Stwierdzenie wystąpienia gorczycy polnej i kapusty polnej powoduje dyskwalifikację plantacji
2	Len zwyczajny	Chaber bławatek Lnianka, wszystkie gatunki Życica lnowa i roczna Gorczyca polna Lepczyca Powój polny Rdest, wszystkie gatunki Szczawik
3	Mak lekarski	Komosa biała	Stwierdzenie wystąpienia lulka czarnego i maku polnego powoduje dyskwalifikację plantacji
4	Rzepak Rzepik	Rzepak, formy nieuprawne Wyka, wszystkie gatunki Gorczyca polna Przytulia czepna Kapusta polna
5	Kminek zwyczajny	Chaber bławatek Perz właściwy Chwasty z rodziny selerowatych
6	Pozostałe gatunki	Ogólne

Podział roślin kapustowatych na grupy w zależności od możliwości przekrzyżowania się

Grupa I
Brukselka Kapusta pastewna Kapusta Kalafior Brokuł Dzika kapusta	przekrzyżowanie możliwe z każdym gatunkiem w grupie, nie krzyżują się z gatunkami z grupy II i III
Grupa II
Kapusta chińska Brukiew Rzepak oleisty Rzepik Rzepa Gorczyca sarepska Gorczyca czarna	przekrzyżowanie możliwe z każdym gatunkiem w grupie, nie krzyżują się z gatunkami z grupy I i III
Grupa III
Gorczyca biała Rzodkiew Rzodkiewka	przekrzyżowanie łatwe z każdym gatunkiem w grupie, nie krzyżują się z gatunkami z grupy I i II

IV.

Wymagania dotyczące wytwarzania materiału siewnego buraka cukrowego i pastewnego

Materiał siewny buraka może być wytwarzany metodą bezwysadkową, wyłącznie z materiału siewnego uznanego w urzędowej ocenie w kategorii elitarny.

Materiał siewny buraka wytworzony metodą bezwysadkową uznaje się w najniższym stopniu kwalifikacji (dla buraka jest to C/1).

1. Nazwy gatunków buraków i obowiązujący najniższy stopień kwalifikacji

Lp.	Nazwa polska	Nazwa łacińska	Najniższy stopień kwalifikacji dla buraków
1	Burak cukrowy	Beta vulgaris L. ssp. vulgaris convar. vulgaris var. altissima Doll	C/1
2	Burak pastewny	Beta vulgaris L. ssp. vulgaris convar. vulgaris var. rapacea K. Koch	C/1

2. Odmiany mieszańcowe:

1) materiał siewny składników rodzicielskich odmian mieszańcowych powinien być uznany w urzędowej ocenie jako spełniający wymagania dla materiału bazowego (B);

3. Ocena stanu plantacji

Lp.	Wyszczególnienie
Obowiązują dwie oceny stanu plantacji
1	dla metody tradycyjnej wytwarzania materiału siewnego buraków odmian ustalonych:
pierwsza		w pierwszym roku uprawy (wytwarzanie wysadków), w pierwszej połowie września
druga		w drugim roku uprawy (wytwarzanie nasion) w okresie od pełni kwitnienia do początku dojrzewania nasion
2	dla metody bezwysadkowej wytwarzania materiału siewnego buraków odmian ustalonych:
pierwsza		w pierwszym roku uprawy na przełomie września i października
druga		w drugim roku uprawy (wytwarzanie nasion) w okresie od pełni kwitnienia do początku dojrzewania nasion
3	dla metody bezwysadkowej wytwarzania materiału siewnego buraków odmian mieszańcowych:
pierwsza		w drugim roku uprawy w okresie pełni kwitnienia
druga		w drugim roku uprawy w okresie dojrzewania nasion
Obowiązują trzy oceny stanu plantacji
4	dla metody tradycyjnej wytwarzania materiału siewnego buraków odmian mieszańcowych:
pierwsza		w pierwszym roku uprawy (wytwarzanie wysadków), w pierwszej połowie września
druga		w drugim roku uprawy w okresie pełni kwitnienia
trzecia		w drugim roku uprawy w okresie dojrzewania nasion

4. Przedplon:

1) plantacje nasienne buraka zakłada się na polu, na którym w ostatnim roku lub kilku latach poprzedzających rok założenia ocenianej plantacji nie były uprawiane rośliny wykluczające możliwość produkcji materiału siewnego, w szczególności, na którym w ciągu ostatnich czterech lat uprawiano buraki lub występowały burakochwasty, albo

2) w roku poprzedzającym rok założenia ocenianej plantacji były uprawiane gatunki roślin z rodziny Brassicaceae.

5. Izolacja przestrzenna¹⁾

Lp.	Wyszczególnienie	Minimalna odległość w m nie mniejsza niż
1	Od źródeł pyłku z rodzaju Beta wynosi:
	1) dla materiału elitarnego	1.000
	2) dla materiału kwalifikowanego, z wyjątkiem podanego poniżej:	1.000
	a) jeżeli zapylacz lub jeden z zapylaczy jest diploidem, od źródeł pyłku buraków tetraploidalnych	600
	b) jeżeli zapylacz jest wyłącznie tetraploidem:
	- od źródeł pyłku buraków diploidalnych	600
	- od źródeł pyłku buraków o nieznanej ploidalności²⁾	600
	c) jeżeli zapylacz lub jeden z zapylaczy jest diploidem, od źródeł pyłku buraków diploidalnych	300
	d) jeżeli zapylacz lub jeden z zapylaczy jest tetraploidem, od źródeł pyłku buraków tetraploidalnych	300
	e) pomiędzy plantacjami nasiennymi, na których nie jest stosowana męska sterylność	300
2	Nie jest wymagana izolacja przestrzenna między plantacjami nasiennymi buraka odmian mieszańcowych, dla których stosowany jest ten sam zapylacz

Objaśnienia

¹⁾ Na plantacji, na której wytwarzane są wysadki buraków, izolację przed zamieszaniem mechanicznym podczas wegetacji oraz zbioru stanowi pas technologiczny o szerokości nie mniejszej niż 2 m.

²⁾ Jeżeli nie jest określona ploidalność odmiany buraka, należy stosować izolację jak dla buraka o nieznanej ploidalności.

6. Czystość odmianowa:

1) plantacja nasienna buraka powinna być wolna od roślin innych odmian i typów użytkowych buraka;

2) obecność roślin pylących w męskosterylnym składniku odmiany mieszańcowej jest niedopuszczalna.

7. Czystość gatunkowa:

1) plantacje nasienne powinny być praktycznie wolne od gatunków innych niż uprawiany;

2) występowanie roślin należących do innych gatunków, w szczególności burakochwastów, których nasiona są trudne do odróżnienia podczas badania laboratoryjnego od nasion uprawianej odmiany, stanowi podstawę do dyskwalifikacji plantacji.

8. Zachwaszczenie:

1) plantacja nasienna buraka powinna być praktycznie wolna od chwastów;

2) wystąpienie chwastów w ilości utrudniającej dobre wykształcenie nasion lub dokonanie oceny polowej może być podstawą do dyskwalifikacji plantacji.

9. Choroby i szkodniki

Występowanie na plantacji nasiennej chorób i szkodników w stopniu mogącym pogorszyć jakość nasion lub uniemożliwiającym dokonanie oceny jest podstawą do dyskwalifikacji plantacji.

ZAŁĄCZNIK Nr 3

4 SZCZEGÓŁOWE WYMAGANIA DOTYCZĄCE WYTWARZANIA I JAKOŚCI MATERIAŁU SIEWNEGO (SADZENIAKÓW) ZIEMNIAKA

Najniższy stopień kwalifikacji - materiał kwalifikowany klasy B (C/B)

1. Materiał siewny ziemniaka może być wytwarzany według dwóch systemów kwalifikacji:

1) krajowego albo

2) EKG/ONZ (Europejskiego Komitetu Gospodarczego Organizacji Narodów Zjednoczonych).

2. Wyboru systemu kwalifikacji dokonuje składający wniosek o dokonanie oceny materiału siewnego ziemniaka.

3. Oceny polowej, pobierania prób, laboratoryjnej oceny zdrowotności oraz oceny cech zewnętrznych dokonuje się zgodnie z metodykami określonymi przez ministra właściwego do spraw rolnictwa.

4. W ocenie polowej, jak i laboratoryjnej ocenie zdrowotności wyróżnia się następujące porażenia wirusami:

1) łagodne, objawiające się różnego rodzaju zmianami na liściach, takimi jak lekkie mozaiki, plamistości czy deformacje;

2) w stopniu ostrym, charakteryzujące się:

a) smugowatymi lub plamistymi nekrozami na liściach,

b) wyraźnymi mozaikami i przebarwieniami liści,

c) deformacjami i zwijaniem liści,

d) kruchością i łamliwością liści,

e) karłowatością roślin.

5. Porażenie w stopniu ostrym uznaje się, jeżeli objawy, o których mowa w ust. 4, wywołane są przez:

1) wirusy:

a) wirus liściozwoju ziemniaka (PLRV) lub

b) wirus Y ziemniaka (PVY), lub

c) mozaika A ziemniaka (PVA), lub

d) wiroza M ziemniaka (PVM);

2) kombinacje wirusów:

a) wirus Y ziemniaka (PVY) łącznie z mozaiką X ziemniaka (PVX) lub

b) mozaika A ziemniaka (PVA) łącznie z mozaiką X ziemniaka (PVX), lub

c) mozaika X ziemniaka (PVX) łącznie z wirozą S ziemniaka (PVS).

6. Ocena polowa:

1) ocena stanu plantacji:

a) dla plantacji, na których są wytwarzane sadzeniaki ziemniaka, przeprowadza się nie mniej niż dwie oceny stanu plantacji:

- pierwszą - kiedy rośliny osiągną wysokość około 20 cm,

- drugą - w okresie od pełni kwitnienia plantacji do dwóch tygodni po kwitnieniu, jednak nie później niż przed początkiem żółknięcia i zasychania liści,

b) jeżeli na plantacji przewidziany jest zabieg chemicznego lub mechanicznego niszczenia naci, druga ocena powinna być wykonana bezpośrednio przed tym zabiegiem; o przewidywanym terminie desykacji powiadamia się wojewódzkiego inspektora ochrony roślin i nasiennictwa;

2) przedplon

Plantacji nasiennych ziemniaka nie zakłada się na polu, na którym w ostatnich trzech latach poprzedzających rok założenia ocenianej plantacji uprawiano rośliny z rodziny Solanaceae, w szczególności ziemniak, pomidor, tytoń;

3) izolacja przestrzenna:

a) minimalna odległość plantacji nasiennych ziemniaka od innych plantacji ziemniaka oraz tytoniu lub pomidorów powinna wynosić nie mniej niż:

- dla sadzeniaków kategorii elitarne - 100 m,

- dla sadzeniaków kategorii kwalifikowane - 50 m,

b) odległość określona w lit. a może być zmniejszona do dwóch redlin, w przypadku gdy plantacja sadzeniaków:

- elitarnych sąsiaduje z plantacją podlegającą ocenie i spełniającą wymagania określone dla sadzeniaków kwalifikowanych klasy C/A,

- kwalifikowanych sąsiaduje z plantacją podlegającą ocenie i spełniającą wymagania określone dla sadzeniaków kwalifikowanych klasy C/B.

Jeżeli nie zostały spełnione wymagania określone w lit. b:

1) tiret pierwsze - plantację degraduje się do kategorii kwalifikowany klasy C/B,

2) tiret drugie - plantację dyskwalifikuje się;

4) czystość gatunkowa i zachwaszczenie:

a) plantacje, na których jest wytwarzany materiał siewny ziemniaka, powinny być praktycznie wolne od roślin innych gatunków uprawnych,

b) występowanie chwastów, szczególnie z rodziny psiankowatych, w ilościach mogących pogorszyć jakość wytwarzanych sadzeniaków lub stan ich zdrowotności, a także utrudniających właściwe wykonanie oceny stanowi podstawę do dyskwalifikacji plantacji;

5) występowanie chorób i szkodników:

a) porażenie roślin przez inne choroby lub szkodniki w stopniu utrudniającym prawidłowy rozwój roślin lub uniemożliwiającym właściwe wykonanie oceny stanowi podstawę do dyskwalifikacji plantacji,

b) plantacja nasienna ziemniaka powinna być wolna od organizmów kwarantannowych;

6) plantację nasienną ziemniaka dyskwalifikuje się, jeżeli:

a) wyrównanie roślin uniemożliwia prawidłowe wykonanie oceny,

b) występują puste miejsca w ilości większej niż 30 % powierzchni plantacji,

c) jest wyraźnie opóźniony stan wegetacji roślin w stosunku do przeciętnego stanu innych plantacji tej samej odmiany w danym rejonie, spowodowany późnym terminem sadzenia.

7. Laboratoryjna ocena zdrowotności sadzeniaków ziemniaka:

1) ocena laboratoryjna sadzeniaków ziemniaka jest dokonywana w przypadku uznania plantacji nasiennej po ocenie polowej, w celu weryfikacji wyników oceny polowej w zakresie stopnia porażenia chorobami wirusowymi;

2) próby bulw ziemniaka do laboratoryjnej oceny zdrowotności są pobierane z plantacji przed ich wykopaniem lub, jeżeli jest to uzasadnione, z kopca lub przechowalni;

3) laboratoryjna ocena zdrowotności jest dokonywana na tzw. próbie oczkowej i przy zastosowaniu testu ELISA;

4) test ELISA stosuje się do diagnostyki wirusów mogących spowodować dużą obniżkę plonów, w szczególności:

a) wirusa liściozwoju ziemniaka (PLRV),

b) wirusa Y ziemniaka (PVY),

c) wirozy M ziemniaka (PVM);

5) dla sadzeniaków ziemniaka kategorii kwalifikowane klasy B (C/B) w laboratoryjnej ocenie zdrowotności można:

a) odstąpić od wykonania testu ELISA pod warunkiem, że w wyniku bonitacji roślin otrzymanych w próbie oczkowej stopień porażenia wirusami nie budził wątpliwości,

b) wykonać uproszczoną ocenę laboratoryjną pod warunkiem, że właściciel plantacji o powierzchni nie mniejszej niż 2 ha podjął działania zapewniające utrzymanie wysokiego stanu zdrowotności plantacji;

6) działania, o których mowa w pkt 5 lit. b, polegają w szczególności na:

a) obsadzeniu plantacji sadzeniakami ziemniaka, które były poddane laboratoryjnej ocenie zdrowotności, w wyniku której stwierdzono poziom porażenia nieprzekraczający wymagań określonych dla kwalifikowanych sadzeniaków ziemniaka klasy A (C/A),

b) obsadzeniu plantacji sadzeniakami ziemniaka odmian:

- które uzyskały ocenę odporności na wirusa Y nie mniejszą niż 7,0 (dotyczy oceny polowej dokonanej w doświadczeniach rejestrowych będącej średnią z wszystkich punktów doświadczalnych otrzymanych w okresie nie krótszym niż dwa lata),

- charakteryzujących się wyraźnymi i typowymi objawami porażenia przez wirusy,

- których średnie porażenie na plantacjach nasiennych w okresie ostatnich 3 lat nie było większe niż 5 %, w tym nie większe niż 2 % porażenia w stopniu ciężkim,

- których plantacje nasienne były prowadzone na obszarze o tych samych warunkach środowiskowych co plantacja, która ma być poddana uproszczonej ocenie laboratoryjnej, i przez ostatnie 3 lata zajmowały łącznie powierzchnię nie mniejszą niż 10 ha oraz nie było zastrzeżeń co do ich zdrowotności,

c) monitorowaniu nalotu i systematycznym zwalczaniu mszyc,

d) zapewnieniu, że na wszystkich sąsiadujących plantacjach w urzędowej ocenie został potwierdzony stopień porażenia przez choroby wirusowe na poziomie nie wyższym niż 5 %,

e) prowadzeniu systematycznej selekcji negatywnej mającej na celu usunięcie roślin porażonych lub podejrzanych o infekcję,

f) poddaniu zabiegowi defoliacji w terminie określonym na dany rok dla poszczególnych grup wczesności,

g) przeprowadzeniu oceny, czy w czasie zbioru bulw odrosty części zielonych po defoliacji wystąpiły w nie więcej niż na:

- 5 %, w przypadku braku mszyc na odrostach, albo

- 1 %, w przypadku stwierdzenia występowania mszyc.

8. Ocena cech zewnętrznych:

1) wymagania dotyczące jakości sadzeniaków ziemniaka w ocenie cech zewnętrznych:

a) sadzeniaki powinny być wolne od organizmów kwarantannowych,

b) dopuszczalną wielkość partii stanowi zbiór sadzeniaków netto z jednej plantacji, nie więcej jednak niż 50 ton; wielkość partii może być przekroczona nie więcej niż o 5 %,

c) partia sadzeniaków przygotowana do oceny cech zewnętrznych powinna być jednolita pod względem cech jakościowych,

d) sadzeniaki w partii powinny:

- być dojrzałe, czyste i suche,

- nie wykazywać objawów nadmarznięcia, zaparzenia lub porośnięcia,

- mieć kształt i zabarwienie miąższu typowe dla odmiany;

2) sadzeniaki w partii przygotowanej do oceny cech zewnętrznych, z wyłączeniem odmian dla zachowania bioróżnorodności roślin rolniczych, powinny być posortowane tak, aby:

a) nie występowały bulwy, które przechodzą przez kwadratowe oczko sortownika o boku 25 mm,

b) bulwy, które nie przechodzą przez kwadratowe oczko sortownika o boku 35 mm, zostały podzielone na frakcje o wymiarach stanowiących krotność 5 mm,

c) w partii mogą znajdować się sadzeniaki kilku frakcji o różnych wymiarach, zwanych dalej "kalibrażem", posortowane w sposób określony w lit. b;

3) różnica między najmniejszym i największym wymiarem bulw w jednej partii nie może być większa niż 20 mm;

4) sadzeniaków nie traktuje się środkiem chemicznym hamującym rozwój kiełków, który jest stosowany podczas przechowywania bulw ziemniaka innych niż sadzeniaki.

9. Szczegółowe wymagania dla oceny polowej, laboratoryjnej oceny zdrowotności oraz oceny cech zewnętrznych są określone w tabelach 1 i 2:

Tabela 1

Szczegółowe wymagania dla sadzeniaków ziemniaka określone dla poszczególnych ocen według systemu kwalifikacji EKG/ONZ

Oceniana wada	Sadzeniaki kategorii elitarne					Sadzeniaki kategorii kwalifikowane
Oceniana wada	PB/M	PB/III	PB/II	B/I	B/II	C/A	C/B
OCENA POLOWA
Inne odmiany i rośliny nietypowe dla odmiany	0,0	0,0	0,01	0,25	0,25	0,5	0,5
Czarna nóżka	0,0	0,0	0,0	0,5	1,0	1,5	2,0
Choroby wirusowe i wirusopodobne¹⁾	0,0	0,0	0,1	0,4(0,2)	0,8(0,4)	2,0(1,0)	10,0(2,0)
LABORATORYJNA OCENA ZDROWOTNOŚCI
Rośliny nietypowe dla odmiany	0,0	0,0	0,01	0,25	0,25	0,5	0,5
Choroby wirusowe i wirusopodobne¹⁾	0,0	0,0	0,5	2,0(1,0)	4,0(2,0)	10,0(5,0)	10,0
OCENA CECH ZEWNĘTRZNYCH
Ziemia i inne zanieczyszczenia	0,0	1,0	1,0	2,0	2,0	2,0	2,0
Bulwy z objawami suchej lub mokrej zgnilizny oprócz wywołanej przez organizmy kwarantannowe	0,0	0,0	0,2	1,0	1,0	1,0	1,0
Bulwy o nieodpowiednim kalibrażu	-	1,0	2,0	3,0	3,0	3,0	3,0
Rizoktonia²⁾	0,0	0,0	1,0(1,0)	5,0(10,0)	5,0(10,0)	5,0(10,0)	5,0(10,0)
Uszkodzenia zewnętrzne	0,0	3,0	3,0	3,0	3,0	3,0	3,0
Parch zwykły²⁾	0,0	0,0	5,0(10,0)	5,0(33,3)	5,0(33,3)	5,0(33,3)	5,0(33,3)
Parch prószysty²⁾	0,0	0,0	1,0(10,0)	1,0(10,0)	1,0(10,0)	1,0(10,0)	1,0(10,0)
Bulwy z plamistością miąższu na poprzecznym przekroju²⁾	0,0	0,0	1,0(10,0)	5,0(10,0)	5,0(10,0)	5,0(10,0)	5,0(10,0)
Suma wad z wyłączeniem kalibrażu w ocenie cech zewnętrznych	0,0	3,0	5,0	6,0	6,0	6,0	6,0

Objaśnienia

¹⁾ Wartości w nawiasach oznaczają procent ostrego porażenia chorobami wirusowymi.

²⁾ Wartości w nawiasach oznaczają procent porażenia powierzchni bulwy lub odpowiednio powierzchni przekroju poprzecznego bulwy, powyżej którego bulwę uznaje się za wadliwą.

Tabela 2

Szczegółowe wymagania dla sadzeniaków ziemniaka określone dla poszczególnych ocen według krajowego systemu kwalifikacji

Oceniana wada	Sadzeniaki kategorii elitarne					Sadzeniaki kategorii kwalifikowane
Oceniana wada	PB/M	PB/III	PB/II	B/I	B/II	C/A	C/B
OCENA POLOWA
Inne odmiany i rośliny nietypowe dla odmiany	0,0	0,0	0,25	0,25	0,25	0,5	0,5
Czarna nóżka	0,0	0,5	1,0	1,0	2,0	3,0	4,0
Choroby wirusowe i wirusopodobne¹⁾	0,0	1,0(0,4)	2,0(0,4)	2,0(0,4)	4,0(0,6)	8,0(1,0)	10,0(4,0)
LABORATORYJNA OCENA ZDROWOTNOŚCI
Rośliny nietypowe dla odmiany	0,0	0,0	0,25	0,25	0,25	0,5	0,5
Choroby wirusowe i wirusopodobne¹⁾	0,0	2,0	3,0	3,0	4,0	10,0	10,0
OCENA CECH ZEWNĘTRZNYCH
Ziemia i inne zanieczyszczenia	0,0	1,0	2,0	2,0	2,0	2,0	2,0
Bulwy z objawami suchej lub mokrej zgnilizny oprócz wywołanej przez organizmy kwarantannowe	0,0	0,0	1,0	1,0	1,0	1,0	1,0
Bulwy o nieodpowiednim kalibrażu	-	1,0	3,0	3,0	3,0	3,0	3,0
Uszkodzenia zewnętrzne	0,0	2,0	3,0	3,0	3,0	3,0	3,0
Parch zwykły²⁾	0,0	2,0(10)	5,0(33,3)	5,0(33,3)	5,0(33,3)	5,0(33,3)	5,0(33,3)
Suma wad z wyłączeniem kalibrażu w ocenie cech zewnętrznych	0,0	3,0	6,0	6,0	6,0	6,0	6,0

Objaśnienia

¹⁾ Wartości w nawiasach oznaczają procent ostrego porażenia chorobami wirusowymi.

²⁾ Wartości w nawiasach oznaczają procent porażenia powierzchni bulwy lub odpowiednio powierzchni przekroju poprzecznego bulwy, powyżej którego bulwę uznaje się za wadliwą.

ZAŁĄCZNIK Nr 4

5 SZCZEGÓŁOWE WYMAGANIA DOTYCZĄCE WYTWARZANIA MATERIAŁU SIEWNEGO ROŚLIN WARZYWNYCH

I.

Warzywa kapustne i rzepowate

1. Nazwy gatunków i obowiązujący najniższy stopień kwalifikacji

Lp.	Nazwa polska	Nazwa łacińska	Najniższy stopień kwalifikacji¹⁾ dla poszczególnych gatunków
1	Jarmuż	Brassica oleracea L. convar. acephala (D.C.) Alef. var. sabellica L.	C/1
2	Kalafior	Brassica oleracea L. convar. botrytis (L.) Alef. var. botrytis L.	C/1
3	Brokuł	Brassica oleracea L. convar. botrytis (L.) Alef. var. italica Plenck	C/1
4	Kapusta głowiasta biała	Brassica oleracea L. convar. capitata (L.) Alef. var. alba D.C.	C/1
5	Kapusta głowiasta czerwona	Brassica oleracea L. convar. capitata (L.) Alef. var. rubra D.C.	C/1
6	Kapusta włoska	Brassica oleracea L. convar. capitata (L.) Alef. var. sabauda L.	C/1
7	Kalarepa	Brassica oleracea L. convar. acephala (D.C.) Alef. var. gongylodes L.	C/1
8	Kapusta brukselska	Brassica oleracea L. convar. oleracea var. gemmifera D.C.	C/1
9	Kapusta pekińska	Brassica rapa L.	C/1
10	Rzepa	Brassica rapa L.	C/1
11	Rzodkiew, rzodkiewka	Raphanus sativus L.	C/1

Objaśnienie

¹⁾Jeżeli w upoważnieniu dla podmiotu prowadzącego obrót materiałem siewnym hodowca nie ustalił wyższego stopnia kwalifikacji.

2. Ocena odmian mieszańcowych:

1) materiał siewny składników rodzicielskich odmian mieszańcowych powinien być uznany w urzędowej ocenie jako spełniający wymagania dla materiału bazowego (B);

3. Ocena stanu plantacji

Liczba wymaganych ocen stanu plantacji dla poszczególnych gatunków	Obowiązujący termin dokonania oceny
Dwie oceny stanu plantacji dla roślin jednorocznych:
- pierwsza	w fazie dojrzałości konsumpcyjnej
- druga	w fazie pełni kwitnienia do początku wiązania nasion
Dwie oceny stanu plantacji dla roślin dwuletnich uprawianych metodą bezwysadkową¹⁾:
- pierwsza	w fazie wegetatywnej późną jesienią lub wiosną przed wyrastaniem w pędy nasienne
- druga	w fazie pełni kwitnienia do początku wiązania nasion
Trzy oceny stanu plantacji dla roślin dwuletnich uprawianych metodą tradycyjną:
- pierwsza - ocena plantacji, na której wytwarzane są wysadki	w fazie dojrzałości konsumpcyjnej
- druga - ocena wysadków po przechowaniu	ocena wysadków przed ich wysadzeniem
- trzecia	w fazie pełni kwitnienia do początku wiązania nasion

Objaśnienie

¹⁾Nasiona wytworzone metodą bezwysadkową uznaje się w najniższym stopniu kwalifikacji.

4. Płodozmian

Plantacje nasienne roślin kapustnych i rzepowatych zakłada się na polu, na którym w ostatnim roku lub ostatnich latach poprzedzających rok założenia ocenianej plantacji nie były uprawiane rośliny wykluczające możliwość produkcji materiału siewnego danego gatunku roślin warzywnych, w szczególności innej odmiany tego samego gatunku lub tej samej odmiany, lecz niższego stopnia kwalifikacji, z uwzględnieniem specyfiki gatunku. Plantacji nasiennych warzyw kapustnych nie należy zakładać na polu, na którym w ostatnich czterech latach uprawiano rośliny z rodziny Brassicaceae.

Plantacji nasiennych warzyw rzepowatych nie należy zakładać na polu, na którym w ostatnim roku uprawiano rośliny z rodziny Brassicaceae.

Plantacje nasienne warzyw kapustnych i rzepowatych muszą być wolne od roślin, które są samosiewami z poprzedniej uprawy.

5. Izolacja przestrzenna

Lp.	Wyszczególnienie	Odległość nie mniejsza niż w metrach dla plantacji materiału
		elitarnego	kwalifikowanego i standard
1	Dla warzyw kapustnych oraz rzepy od źródeł pyłku z rodzaju Brassica spp.	1.000	600
2	Dla rzodkwi i rzodkiewki od źródeł pyłku z rodzaju Raphanus spp.	1.000	600
Izolacja dla produkcji wysadków ogranicza się do pasa technologicznego szerokości nie mniej niż 2 m chroniącego przed zamieszaniem mechanicznym podczas zbioru.
Sąsiadującą plantację nasienną zgłoszoną w niższym stopniu kwalifikacji traktuje się jako inną uprawę mogącą doprowadzić do zapylenia obcym pyłkiem oraz porażenia przez organizmy szkodliwe.

Podział roślin kapustowatych na grupy w zależności od możliwości przekrzyżowania się

Grupa I
Brukselka Kapusta pastewna Kapusta Kalafior Brokuł Dzika kapusta	przekrzyżowanie możliwe z każdym gatunkiem w grupie, nie krzyżują się z gatunkami z grupy II i III
Grupa II
Kapusta chińska Brukiew Rzepak oleisty Rzepik Rzepa Gorczyca sarepska Gorczyca czarna	przekrzyżowanie możliwe z każdym gatunkiem w grupie, nie krzyżują się z gatunkami z grupy I i III
Grupa III
Gorczyca biała Rzodkiew Rzodkiewka	przekrzyżowanie łatwe z każdym gatunkiem w grupie, nie krzyżują się z gatunkami z grupy I i II

6. Czystość odmianowa i gatunkowa:

1) występowanie roślin innych odmian na jednostce kwalifikacyjnej plantacji nasiennej warzyw kapustnych i rzepowatych, na których jest produkowany materiał siewny kategorii:

a) elitarny - 0,0,

b) kwalifikowany i standard:

- w pierwszej ocenie - 0,5,

- w drugiej i trzeciej ocenie - 0,0;

2) występowanie roślin innych gatunków z rodzaju Brassicaceae - niedopuszczalne;

3) nieusunięcie zapylacza na plantacji odmian mieszańcowych przed ostatnią oceną powoduje dyskwalifikację plantacji.

7. Choroby i szkodniki

Lp.	Nazwa patogena	Dopuszczalna liczba roślin porażonych na jednostce kwalifikacyjnej
1	Czarna zgnilizna kapustnych (Xantomonas campestris pv. campestris)	3,0
2	Kiła kapusty (Plasmodiophora brassicae)	3,0
3	Sucha zgnilizna kapustnych (Phoma lingam)	3,0
4	Mozaika krzyżowych (TuMV - Turnip mosaic virus)	3,0
Łączna liczba roślin porażonych przez choroby wymienione w lp. 1-4 nie może przekroczyć		6,0
Występowanie innych chorób i szkodników w stopniu ograniczającym prawidłowy rozwój może być powodem dyskwalifikacji plantacji

8. Zachwaszczenie:

1) plantacje nasienne powinny być praktycznie wolne od chwastów, w szczególności należących do rodziny Brassicaceae;

2) zachwaszczenie plantacji w stopniu ograniczającym prawidłowy rozwój nasion lub uniemożliwiającym dokonanie oceny może być podstawą do dyskwalifikacji plantacji.

II.

Warzywa cebulowe

1. Nazwy gatunków i obowiązujący najniższy stopień kwalifikacji:

Lp.	Nazwa polska	Nazwa łacińska	Najniższy stopień kwalifikacji¹⁾ dla poszczególnych gatunków
1	Cebula, w tym echalion	Allium cepa L. - grupa Cepa	C/1
2	Szalotka	Allium cepa L. - grupa Aggregatum	C/1
3	Cebula siedmiolatka (czosnek dęty)	Allium fistulosum L.	C/1
4	Czosnek pospolity	Allium sativum L.	C/1
5	Por	Allium porrum L.	C/1
6	Szczypiorek	Allium schoenoprasum L.	C/1

Objaśnienie

¹⁾Jeżeli w upoważnieniu dla podmiotu prowadzącego obrót materiałem siewnym hodowca nie ustalił wyższego stopnia kwalifikacji.

2. Ocena odmian mieszańcowych:

1) materiał siewny składników rodzicielskich odmian mieszańcowych powinien być uznany w urzędowej ocenie jako spełniający wymagania dla materiału bazowego (B);

3. Ocena stanu plantacji

Liczba wymaganych ocen stanu plantacji dla poszczególnych gatunków	Obowiązujący termin dokonania oceny
Dwie oceny stanu plantacji dla roślin cebulowych uprawianych metodą bezwysadkową¹⁾
- pierwsza	w fazie wegetatywnej przed wyrastaniem w pędy nasienne
- druga	w fazie pełni kwitnienia do początku wiązania nasion
Trzy oceny stanu plantacji dla roślin cebulowych uprawianych metodą tradycyjną
- pierwsza - ocena plantacji, na której wytwarzane są wysadki	w pierwszym roku uprawy przed załamywaniem szczypioru u cebuli
- druga - ocena wysadków po przechowaniu	ocena wysadków przed ich wysadzeniem lub zimujących w gruncie w przypadku pora
- trzecia	w fazie pełni kwitnienia do początku wiązania nasion
Dwie oceny stanu plantacji dla cebuli siedmiolatki i szczypiorku
- pierwsza	w fazie dojrzałości konsumpcyjnej
- druga	w fazie od pełni kwitnienia do początku wiązania nasion
Dwie oceny stanu plantacji dla czosnku pospolitego
- pierwsza	w fazie początku załamywania szczypioru
- druga	po wykopaniu i wysuszeniu - ocena cech zewnętrznych główek
W przypadku produkcji materiału siewnego odmian mieszańcowych każdy składnik ocenia się oddzielnie

Objaśnienie

¹⁾ Nasiona cebuli wytworzone metodą bezwysadkową uznaje się w najniższym stopniu kwalifikacji.

4. Izolacja przestrzenna

Lp.	Wyszczególnienie	Odległość nie mniejsza niż w metrach dla plantacji materiału
		elitarnego	kwalifikowanego i standard
1	Plantacje, na których są wytwarzane wysadki cebuli, szalotki lub czosnku, od innych upraw warzyw cebulowych rozmnażanych wegetatywnie	500
2	Plantacje nasienne cebuli, szalotki, cebuli siedmiolatki oraz szczypiorku od plantacji nasiennych odmian cebuli o żółtej barwie łuski (typu Wolska) oraz innych warzyw cebulowych	1.000
3	Plantacje nasienne cebuli od plantacji nasiennych odmian o czerwonej barwie łuski lub o barwie łuski typu Rijnsburger	4.500	1.000
Izolacja dla produkcji wysadków różnych odmian ogranicza się do pasa technologicznego o szerokości nie mniej niż 2 m chroniącego przed zamieszaniem mechanicznym podczas zbioru

5. Płodozmian

Plantacje nasienne roślin cebulowych zakłada się na polu, na którym w ostatnim roku lub ostatnich latach poprzedzających rok założenia ocenianej plantacji nie były uprawiane rośliny wykluczające możliwość produkcji materiału siewnego danego gatunku, w szczególności innej odmiany tego samego lub tej samej odmiany, lecz niższego stopnia kwalifikacji, z uwzględnieniem specyfiki gatunku.

Plantacji nasiennych warzyw cebulowych nie należy zakładać na polu, na którym w ostatnich czterech latach uprawiano jakiekolwiek rośliny cebulowe.

Plantacje nasienne warzyw cebulowych muszą być wolne od roślin, które są samosiewami z poprzedniej uprawy.

6. Czystość odmianowa i gatunkowa

Lp.	Rodzaj plantacji	Dopuszczalna liczba wad na jednostce kwalifikacyjnej dla kategorii
Lp.	Rodzaj plantacji	elitarny	kwalifikowany i standard
1	Występowanie roślin innych odmian, a w przypadku cebuli, szalotki i czosnku również występowanie cebul o innej barwie łuski, na jednostce kwalifikacyjnej plantacji wysadków cebuli, cebuli siedmiolatki, szalotki, szczypiorku oraz czosnku	0,3	0,5
2	Występowanie roślin innych odmian na jednostce kwalifikacyjnej plantacji wysadków pora	0,0	3,0
3	Na plantacji nasiennej	0,0
4	Występowanie roślin męskopłodnych w składniku matecznym (linia A męskosterylna):
	1) przy produkcji nasion składnika matecznego	5,0	nie dotyczy
	2) przy produkcji nasion odmian mieszańcowych F₁	nie dotyczy	10,0
5	Występowanie roślin innych gatunków roślin cebulowych jest niedopuszczalne
6	Nieusunięcie zapylacza na plantacji odmian mieszańcowych przed ostatnią oceną powoduje dyskwalifikację plantacji

7. Choroby i szkodniki

Lp.	Nazwa organizmu szkodliwego	Dopuszczalna liczba roślin porażonych na jednostce kwalifikacyjnej
Produkcja wysadków oraz materiału nasadzeniowego
1	Niszczyk zjadliwy (Ditylenchus dipsaci)	0,0
2	Żółta karłowatość cebuli OYDV (onion yellow dwarf potyvirus) lub mozaika ogórka CMV (cucumber mosaic virus)	5,0
Wysadki
1	Zgnilizna szyjki cebuli (Botrytis allii)
2	Biała zgnilizna cebuli (Sclerotium cepivorum)
3	Żółta karłowatość cebuli OYDV lub mozaika ogórka CMV
4	Wysadki porażone patogenami wymienionymi w lp. 1-3 łącznie	5,0
Plantacje nasienne
1	Żółta karłowatość cebuli OYDV lub mozaika ogórka CMV	0,0
2	Żółtaczka astrów (Mycoplasma Ladila v. et Elford)	0,0
Występowanie chorób, szczególnie mączniaka rzekomego (Peronospora destructor), i szkodników w stopniu ograniczającym prawidłowy rozwój nasion może powodować dyskwalifikację plantacji

8. Zachwaszczenie:

1) plantacje nasienne powinny być praktycznie wolne od następujących chwastów: czosnków, ostróżeczki, przytulii i rdestów;

2) zachwaszczenie plantacji w stopniu ograniczającym prawidłowy rozwój nasion lub uniemożliwiającym dokonanie oceny może powodować dyskwalifikację plantacji.

III.

Warzywa korzeniowe

1. Nazwy gatunków i obowiązujący najniższy stopień kwalifikacji

Lp.	Nazwa polska	Nazwa łacińska	Najniższy stopień kwalifikacji¹⁾ dla poszczególnych gatunków
1	Burak ćwikłowy	Beta vulgaris L. var. conditiva Alef.	C/1
2	Marchew	Daucus carota L.	C/1
3	Pietruszka	Petroselinum crispum (Miller) Nyman ex A.W. Hill	C/1
4	Seler	Apium graveolens L.	C/1
5	Skorzonera (wężymord)	Scorzonera hispanica L.	C/1

Objaśnienie

¹⁾Jeżeli w upoważnieniu dla podmiotu prowadzącego obrót materiałem siewnym hodowca nie ustalił wyższego stopnia kwalifikacji.

2. Ocena odmian mieszańcowych:

1) materiał siewny składników rodzicielskich odmian mieszańcowych powinien być uznany w urzędowej ocenie jako spełniający wymagania dla materiału bazowego (B);

3. Płodozmian

Plantacje nasienne roślin korzeniowych na polu, na którym w ostatnim roku lub ostatnich latach poprzedzających rok założenia ocenianej plantacji nie były uprawiane rośliny wykluczające możliwość produkcji materiału siewnego danego gatunku, w szczególności innej odmiany tego samego lub tej samej odmiany, lecz niższego stopnia kwalifikacji, z uwzględnieniem specyfiki gatunku.

Plantacji nasiennych warzyw korzeniowych nie należy zakładać na polu, na którym uprawiano rośliny z tej samej rodziny w ostatnich czterech latach.

Plantacje nasienne warzyw korzeniowych muszą być wolne od roślin, które są samosiewami z poprzedniej uprawy.

4. Ocena stanu plantacji

Liczba wymaganych ocen stanu plantacji dla poszczególnych gatunków	Obowiązujący termin dokonania oceny
Dwie oceny stanu plantacji dla roślin korzeniowych uprawianych metodą bezwysadkową¹⁾:
1) dla odmian ustalonych marchwi:
- pierwsza	w fazie wegetatywnej przed wyrastaniem w pędy nasienne
- druga	w fazie pełni kwitnienia do początku dojrzewania nasion
2) dla odmian mieszańcowych marchwi:
- pierwsza	w fazie pełnego kwitnienia baldachów pierwszego rzędu
- druga	w fazie dojrzewania nasion
3) dla pozostałych gatunków - jedna	w okresie od kwitnienia roślin do dojrzewania nasion
Cztery oceny stanu plantacji dla roślin korzeniowych uprawianych metodą tradycyjną:
- pierwsza - ocena plantacji, na której wytwarzane są wysadki	w pierwszym roku uprawy przed kopaniem
- druga - ocena wysadków po przechowaniu	ocena wysadków przed ich wysadzeniem
- trzecia	w fazie pełni kwitnienia
- czwarta	w fazie dojrzewania nasion

Objaśnienie

¹⁾Nasiona wytworzone metodą bezwysadkową uznaje się w najniższym stopniu kwalifikacji.

5. Izolacja przestrzenna

Lp.	Wyszczególnienie	Odległość nie mniejsza niż w metrach dla plantacji materiału
		elitarnego	kwalifikowanego i standard
1	Marchew, pietruszka od innych roślin baldaszkowatych	500
2	Seler i składniki rodzicielskie odmian mieszańcowych marchwi od innych roślin baldaszkowatych	1.000
3	Burak ćwikłowy od jakichkolwiek źródeł pyłku z rodzaju Beta	1.000	600
4	Skorzonera od plantacji nasiennych innych odmian	300
Izolacja dla produkcji wysadków różnych odmian ogranicza się do pasa technologicznego o szerokości nie mniejszej niż 2 m chroniącego przed zamieszaniem mechanicznym podczas zbioru

6. Czystość odmianowa i gatunkowa

Lp.	Rodzaj plantacji	Liczba wad na jednostce kwalifikacyjnej dla kategorii
Lp.	Rodzaj plantacji	elitarny	kwalifikowany i standard
Produkcja wysadków
1	dla marchwi	0,0	0,0
2	dla pietruszki	0,0	2,0
3	dla selera	0,0	0,5
4	dla buraka ćwikłowego	0,0	0,2
5	dla skorzonery	0,0	1,0
Produkcja nasienna
1	dla marchwi, pietruszki, selera i skorzonery	0,0
2	dla buraka ćwikłowego	0,0	1,0
3	w składniku matecznym używanym do produkcji odmiany mieszańcowej buraka ćwikłowego roślin męskopłodnych nie więcej niż	10 %
4	w składniku matecznym używanym do produkcji odmiany mieszańcowej marchwi roślin częściowo męskopłodnych nie więcej niż	15 %
5	występowanie roślin innych gatunków baldaszkowatych lub dla buraka roślin z rodzaju Beta jest niedopuszczalne
6	nieusunięcie zapylacza na plantacji odmian mieszańcowych przed ostatnią oceną powoduje dyskwalifikację plantacji

7. Choroby i szkodniki

Lp.	Nazwa patogena	Dopuszczalna liczba roślin porażonych na jednostce kwalifikacyjnej
Wysadki marchwi i pietruszki i selera
1	Czarna zgnilizna marchwi (Alternaria radicina)	0,0
2	Zgnilizna twardzikowa (Sclerotinia sclerotiorum)	0,0
Plantacje buraka ćwikłowego
1	Skośnik burakowy	0,0
Występowanie chorób i szkodników w stopniu ograniczającym prawidłowy rozwój nasion jest podstawą do dyskwalifikacji plantacji

8. Zachwaszczenie:

1) zachwaszczenie plantacji w stopniu ograniczającym prawidłowy rozwój nasion lub uniemożliwiającym dokonanie oceny może być podstawą do dyskwalifikacji plantacji;

2) występowanie roślin marchwi dziko rosnącej, kwitnącej w tym samym czasie, w odległości mniejszej niż 200 m od ocenianej plantacji, oraz występowanie na polach sąsiadujących bezpośrednio z plantacją dużych ilości chwastów z rodziny baldaszkowatych kwitnących w tym samym czasie może być podstawą do dyskwalifikacji plantacji.

IV.

Warzywa dyniowate

1. Nazwy gatunków i obowiązujący najniższy stopień kwalifikacji:

Lp.	Nazwa polska	Nazwa łacińska	Najniższy stopień kwalifikacji¹⁾ dla poszczególnych gatunków
1	Dynia olbrzymia	Cucurbita maxima Duch.	C/1
2	Dynia zwyczajna	Cucurbita pepo L.	C/1
3	Kawon (arbuz)	Citrullus lanatus (Thunb.) Matsum. et Nakai	C/1
4	Melon	Cucumis melo L.	C/1
5	Ogórek	Cucumis sativus L.	C/1

Objaśnienie

¹⁾Jeżeli w upoważnieniu dla podmiotu prowadzącego obrót materiałem siewnym hodowca nie ustalił wyższego stopnia kwalifikacji.

2. Ocena odmian mieszańcowych:

1) materiał siewny składników rodzicielskich odmian mieszańcowych powinien być uznany w urzędowej ocenie jako spełniający wymagania dla materiału bazowego (B);

3. Ocena stanu plantacji

Liczba wymaganych ocen stanu plantacji dla poszczególnych gatunków	Obowiązujący termin dokonania oceny
Dwie oceny stanu plantacji
Dla odmian ogórka, melona i kawona:
- pierwsza	w okresie kwitnienia i zawiązywania pierwszych owoców
- druga	w okresie dojrzewania nasienników przed zbiorem
Jedna ocena stanu plantacji
Dla dyni olbrzymiej i dyni zwyczajnej	w okresie dojrzałości konsumpcyjnej owoców

4. Płodozmian

Plantacje nasienne roślin dyniowatych na polu, na którym w ostatnim roku lub ostatnich latach poprzedzających rok założenia ocenianej plantacji nie były uprawiane rośliny wykluczające możliwość produkcji materiału siewnego danego gatunku, w szczególności innej odmiany tego samego lub tej samej odmiany, lecz niższego stopnia kwalifikacji, z uwzględnieniem specyfiki gatunku.

Plantacji nasiennych warzyw dyniowatych nie należy zakładać na polu, na którym w ostatnich dwóch latach uprawiano rośliny z tej samej rodziny.

Plantacje nasienne warzyw dyniowatych muszą być wolne od roślin, które są samosiewami z poprzedniej uprawy.

5. Izolacja przestrzenna

Lp.	Wyszczególnienie	Odległość nie mniejsza niż w metrach dla plantacji
Lp.	Wyszczególnienie	wszystkich kategorii
1	Dla odmian ogórka od innych plantacji ogórka	500
2	Dla odmian melona, kawona, dyni olbrzymiej i zwyczajnej od innych odmian w obrębie gatunku, a także od odmian botanicznych dyni zwyczajnej	1.000
3	Dla odmian mieszańcowych ogórka:
	odległość plantacji, na której produkuje się nasiona składnika rodzicielskiego, od zasiewów innej odmiany lub formy ogórka niż ta, której pyłkiem mają być zapylone rośliny na plantacji	1.000
	odległość plantacji, na której produkuje się nasiona odmiany mieszańcowej, od zasiewów odmiany lub formy ogórka innej niż zapylacz	1.000
	odległość plantacji, na której produkuje się nasiona odmiany mieszańcowej, od zasiewów odmiany lub formy ogórka takiej samej jak składnik ojcowski	100
	odległość plantacji, na której produkuje się nasiona odmiany mieszańcowej, od plantacji innej odmiany, na której produkuje się nasiona odmiany mieszańcowej przy użyciu tego samego zapylacza	200
	przy produkcji nasion odmiany mieszańcowej i reprodukcji składnika matecznego za pomocą linii dopełniającej odległość pomiędzy składnikami rodzicielskimi chroniąca przed mechanicznym zamieszaniem	podwójna szerokość międzyrzędzi składnika matecznego
	odległość plantacji, na której produkuje się nasiona zapylacza, od zasiewów innej odmiany lub składnika rodzicielskiego	1.000
4	Dla odmian mieszańcowych melona i kawona oraz dyni zwyczajnej w uprawie polowej	1.000

6. Czystość odmianowa:

1) przy produkcji odmian ustalonych oraz składników rodzicielskich występowanie roślin innych odmian i form nietypowych ogórka jest niedopuszczalne;

2) przy wytwarzaniu składnika matecznego występowanie roślin typowo jednopiennych¹⁾ bądź hermafrodytycznych nie więcej niż:

a) 3 % - dla odmian typu sałatkowego,

b) 5 % - dla odmian typu konserwowego;

3) przy produkcji nasion odmiany mieszańcowej występowanie roślin innych odmian i form nietypowych ogórka:

a) w składniku matecznym jest niedopuszczalne,

b) w zapylaczu nie więcej niż - 0,5 rośliny na jednostkę kwalifikacyjną;

4) przy produkcji nasion odmiany mieszańcowej występowanie roślin typowo jednopiennych¹⁾ bądź hermafrodytycznych w składniku matecznym nie może być więcej niż:

a) 8 % - u odmian typu sałatkowego,

b) 10 % - u odmian typu konserwowego;

5) przy produkcji odmian ustalonych i mieszańcowych pozostałych gatunków warzyw dyniowatych występowanie na plantacji innych odmian jest niedopuszczalne;

6) nieusunięcie zapylacza na plantacji odmian mieszańcowych przed ostatnią oceną powoduje dyskwalifikację plantacji.

7. Choroby i szkodniki

Występowanie chorób i szkodników w stopniu ograniczającym prawidłowy rozwój nasion lub uniemożliwiającym prawidłowe dokonanie oceny może być powodem dyskwalifikacji plantacji.

8. Zachwaszczenie

Zachwaszczenie plantacji w stopniu ograniczającym prawidłowy rozwój nasion lub uniemożliwiającym prawidłowe dokonanie oceny może być powodem dyskwalifikacji plantacji.

Objaśnienie

¹⁾ Roślina typowo jednopienna to roślina, która na pędzie głównym do 10. węzła wytwarza najczęściej same kwiaty męskie, w następnych węzłach na zmianę występują kwiaty męskie z żeńskimi do końca wegetacji. Na pędach bocznych kwiaty żeńskie występują częściej niż na pędzie głównym. Do roślin jednopiennych nie zalicza się roślin, na których występują nieliczne kwiaty męskie przy ciągłym tworzeniu się kwiatów żeńskich na kolejnych węzłach.

V.

Warzywa psiankowate

1. Nazwy gatunków i obowiązujący najniższy stopień kwalifikacji

Lp.	Nazwa polska	Nazwa łacińska	Najniższy stopień kwalifikacji¹⁾ dla poszczególnych gatunków
1	Pomidor	Lycopersicon esculentum Mill.	C/1
2	Papryka	Capsicum annuum L.	C/1
3	Oberżyna	Solanum melongena L.	C/1

Objaśnienie

¹⁾Jeżeli w upoważnieniu dla podmiotu prowadzącego obrót materiałem siewnym hodowca nie ustalił wyższego stopnia kwalifikacji.

2. Ocena odmian mieszańcowych:

1) materiał siewny składników rodzicielskich odmian mieszańcowych powinien być uznany w urzędowej ocenie jako spełniający wymagania dla materiału bazowego (B);

3. Ocena stanu plantacji

Liczba wymaganych ocen stanu plantacji dla poszczególnych gatunków	Obowiązujący termin dokonania oceny
Dwie oceny stanu plantacji
Dla ustalonych i mieszańcowych odmian pomidora:
- pierwsza	w okresie kwitnienia
- druga	w okresie dojrzewania owoców środkowych gron
Jedna ocena stanu plantacji
Dla ustalonych i mieszańcowych odmian papryki i oberżyny	w okresie dojrzewania owoców
W przypadku produkcji materiału siewnego odmian mieszańcowych każdy składnik ocenia się oddzielnie
Nieusunięcie zapylacza na plantacjach odmian mieszańcowych przed ostatnią oceną powoduje dyskwalifikację plantacji

4. Płodozmian

Plantacje nasienne roślin psiankowatych zakłada się na polu, na którym w roku poprzedzającym rok założenia ocenianej plantacji nie były uprawiane rośliny z tej samej rodziny. Plantacje nasienne warzyw psiankowatych powinny być wolne od roślin, które są samosiewami z poprzedniej uprawy.

5. Izolacja przestrzenna

Odległość plantacji:

1) pomidora od innych plantacji wszystkich gatunków roślin psiankowatych nie mniejsza niż - 50 m;

2) nasiennych papryki i oberżyny od innych odmian nie mniejsza niż - 400 m.

6. Czystość odmianowa:

1) występowanie roślin innych odmian i linii pomidora oraz papryki w każdym składniku rodzicielskim jest niedopuszczalne;

2) dla pomidora - występowanie roślin zapylonych wsobnie w składniku matecznym przy produkcji nasion mieszańcowych:

a) przy zastosowaniu składnika matecznego płodnego nie więcej niż - 2 %¹⁾;

b) przy zastosowaniu składnika z cechą funkcjonalnej męskiej sterylności, roślin z kwiatami zapylonymi wsobnie co najmniej na dwóch kolejnych gronach nie więcej niż - 5 %²⁾.

W celu określenia przez kwalifikatora występowania roślin zapylonych wsobnie nie mogą być one zapylane sztucznie.

______

¹⁾ W matecznym, płodnym składniku pomidora sprawdzenia, czy nastąpiło wsobne zapylenie kwiatów, dokonuje się w okresie usuwania pylników. Stwierdzenie rozchylenia działek kielicha ponad 90° na którymkolwiek ze sprawdzanych kwiatów i zmiana barwy płatków korony na ciemnożółtą oznacza, że nastąpiło zapylenie wsobne.

²⁾ W matecznym składniku pomidora z cechą funkcjonalnej męskiej sterylności dla określenia występowania roślin zapylonych wsobnie kwalifikator podczas pierwszej oceny wybiera losowo 1 % roślin, które odpowiednio oznacza. Podczas drugiej oceny na tych roślinach kwalifikator dokonuje obliczenia roślin z kwiatami zapylonymi wsobnie.

7. Zachwaszczenie:

1) plantacje nasienne warzyw psiankowatych powinny być praktycznie wolne od następujących chwastów: lulka czarnego, bielunia dziędzierzawy, psianki czarnej;

2) zachwaszczenie plantacji w stopniu uniemożliwiającym prawidłowy rozwój nasion lub uniemożliwiającym prawidłowe dokonanie oceny stanowi podstawę do jej dyskwalifikacji.

8. Choroby i szkodniki:

1) pomidor:

a) występowanie żółtego liściozwoju pomidora (TYLCV - tomato yellow leaf curl virus) i raka bakteryjnego pomidora (Corynebacterium michiganensis) - niedopuszczalne,

b) silne porażenie roślin mozaiką pomidora (ToMV - tomato mosaic tobamovirus), bakteryjną cętkowatością pomidora (Pseudomonas syringae pv. tomato), bakteryjną zgnilizną rdzenia (Pseudomonas corugata), śluzakiem (Pseudomonas solanacearum), alternariozami (Alternaria solani i Alternaria alternari), mątwikiem ziemniaczanym (Globodera rostochiensis) i innymi chorobami oraz szkodnikami powodującymi gorsze wykształcenie owoców stanowi podstawę do dyskwalifikacji plantacji;

2) papryka - plantacja powinna być praktycznie wolna od roślin z objawami porażenia przez czarną plamistość bakteryjną (Xanthomonas vesicatoria), wirus mozaiki papryki, fuzariozę i szarą pleśń.

VI.

Warzywa strączkowe

1. Nazwy gatunków i obowiązujący najniższy stopień kwalifikacji

Lp.	Nazwa polska	Nazwa łacińska	Najniższy stopień kwalifikacji¹⁾ dla poszczególnych gatunków
1	Bób	Vicia faba L. (partim)	C/1
2	Groch siewny (cukrowy i łuskowy)	Pisum sativum L.	C/1
3	Fasola wielokwiatowa	Phaseolus coccineus L.	C/1
4	Fasola zwykła	Phaseolus vulgaris L.	C/1

Objaśnienie

¹⁾ Jeżeli w upoważnieniu dla podmiotu prowadzącego obrót materiałem siewnym hodowca nie ustalił wyższego stopnia kwalifikacji.

2. Ocena stanu plantacji

Liczba wymaganych ocen stanu plantacji dla poszczególnych gatunków	Obowiązujący termin dokonania oceny
Jedna ocena stanu plantacji dla:
- grochu i bobu	w okresie od kwitnienia do zawiązywania strąków
- fasoli zwykłej i wielokwiatowej	w okresie pełnego wykształcania strąków, ale przed ich zasychaniem

3. Płodozmian

Plantacje nasienne roślin strączkowych zakłada się na polu, na którym w ostatnim roku lub ostatnich latach poprzedzających rok założenia ocenianej plantacji nie były uprawiane rośliny wykluczające możliwość produkcji materiału siewnego danego gatunku, w szczególności innej odmiany tego samego lub tej samej odmiany, lecz niższego stopnia kwalifikacji, z uwzględnieniem specyfiki gatunku.

Plantacji nasiennych warzyw strączkowych nie należy zakładać na polu, na którym w okresie ostatnich czterech lat uprawiano jakiekolwiek rośliny z tej samej rodziny.

Plantacje nasienne warzyw strączkowych muszą być wolne od roślin, które są samosiewami z poprzedniej uprawy.

4. Izolacja przestrzenna

Lp.	Wyszczególnienie	Odległość nie mniejsza niż w metrach dla plantacji kategorii
		elitarny	kwalifikowany i standard
1	Odległość plantacji grochów wszystkich stopni kwalifikacji od plantacji i zasiewów innych odmian i typów grochu oraz od innych gatunków roślin strączkowych	2
2	Odległość plantacji fasoli zwykłej wszystkich stopni kwalifikacji od plantacji i zasiewów innych odmian fasoli zwykłej	50
3	Odległość plantacji fasoli wielokwiatowej od innych plantacji i zasiewów fasoli zwykłej	200
4	Odległość plantacji fasoli wielokwiatowej wszystkich stopni kwalifikacji od plantacji i zasiewów innych odmian fasoli wielokwiatowej	500
5	Odległość plantacji bobu wszystkich stopni kwalifikacji od plantacji nasiennych innych odmian i niekwalifikowanych zasiewów bobu oraz od upraw bobiku	500

5. Czystość odmianowa - występowanie innych odmian i typów na jednostce kwalifikacyjnej:

1) na plantacji kwalifikowanej i standard grochu i bobu nie więcej niż - 0,3 rośliny;

2) na plantacji kwalifikowanej i standard fasoli nie więcej niż - 0,1 rośliny;

3) na plantacji elitarnej grochu, fasoli i bobu jest niedopuszczalne.

6. Choroby i szkodniki - występowanie ostrej bakteriozy fasoli (Xanthomonas campestris pv. phaseoli) jest niedopuszczalne.

VII.

Warzywa liściowe

1. Wykaz gatunków i obowiązujący najniższy stopień kwalifikacji

Lp.	Nazwa polska	Nazwa łacińska	Najniższy stopień kwalifikacji¹⁾ dla poszczególnych gatunków
1	Sałata	Lactuca sativa L.	C/1
2	Burak liściowy	Beta vulgaris L.	C/1
3	Szpinak	Spinacia oleracea L.	C/1
4	Endywia	Cichorium endivia L.	C/1
5	Trybuła ogrodowa	Anthriscus cerefolium (L.) Hoffm.	C/1
6	Roszponka warzywna	Valerianella locusta (L.) Laterrade	C/1
7	Pietruszka liściowa²⁾	Petroselinum esculentum L.	C/1
8	Cykoria liściowa³⁾	Cichorium intybus L.	C/1
9	Rabarbar	Rheum rhabarbarum L.	C/1

Objaśnienia

¹⁾ Jeżeli w upoważnieniu dla podmiotu prowadzącego obrót materiałem siewnym hodowca nie ustalił wyższego stopnia kwalifikacji.

²⁾ Wymagania jak dla odmian korzeniowych pietruszki.

³⁾ Wymagania w wytwarzaniu jak dla cykorii korzeniowej, przy czym materiał siewny wyłącznie odmian cykorii liściowej może być wytwarzany w kategorii standard.

2. Ocena odmian mieszańcowych:

1) materiał siewny składników rodzicielskich odmian mieszańcowych powinien być uznany w urzędowej ocenie jako spełniający wymagania dla materiału bazowego (B);

3. Ocena stanu plantacji

Liczba wymaganych ocen stanu plantacji dla poszczególnych gatunków	Obowiązujący termin dokonania oceny
Dwie oceny stanu plantacji:
- pierwsza	w okresie dojrzałości konsumpcyjnej
- druga	w okresie dojrzewania nasion, a w przypadku rabarbaru w fazie od pełni kwitnienia do początku wiązania nasion
W przypadku plantacji nasiennej sałaty prowadzonej metodą bezgłówkową zakłada się pod nadzorem wojewódzkiego inspektora ochrony roślin i nasiennictwa poletko kontrolne o powierzchni nie mniejszej niż 10 m² z każdej wysianej partii w celu sprawdzenia wyrównania i tożsamości odmiany. Poletko kontrolne zakłada się w gospodarstwie, na terenie którego jest prowadzona kwalifikacja plantacji nasiennych obsianych materiałem siewnym z tych partii

4. Płodozmian

Plantacje nasienne roślin liściowych zakłada się na polu, na którym w ostatnim roku lub ostatnich latach poprzedzających rok założenia ocenianej plantacji nie były uprawiane rośliny wykluczające możliwość produkcji materiału siewnego danego gatunku, w szczególności innej odmiany tego samego lub tej samej odmiany, lecz niższego stopnia kwalifikacji, z uwzględnieniem specyfiki gatunku.

Plantacji nasiennych warzyw liściowych nie zakłada się na polu, na którym uprawiano rośliny z tej samej rodziny w okresie ostatnich dwóch lat, a w przypadku buraka liściowego oraz rabarbaru - czterech lat. Plantacje nasienne warzyw liściowych muszą być wolne od roślin, które są samosiewami z poprzedniej uprawy.

5. Izolacja przestrzenna

Lp.	Wyszczególnienie	Odległość nie mniejsza niż w metrach dla plantacji kategorii
		elitarny	kwalifikowany i standard
1	Odległość od źródeł obcych pyłków zdolnych do spowodowania poważnej degeneracji odmian warzyw liściowych, z wyjątkiem buraka liściowego	500	300
2	Odległość plantacji nasiennych szpinaku od innych odmian szpinaku	1.000
3	Odległość plantacji składników rodzicielskich nasiennych szpinaku od innych odmian szpinaku	3.000
4	Odległość plantacji nasiennych buraka liściowego od jakichkolwiek źródeł pyłku z rodzaju Beta	1.000

6. Czystość odmianowa

Występowanie roślin innych odmian i typów roślin warzyw liściowych na jednostce kwalifikacyjnej na plantacji, na której jest wytwarzany materiał kategorii:

1) elitarny - jest niedopuszczalne;

2) kwalifikowany i standard:

- podczas pierwszej oceny nie więcej niż 0,5 rośliny;

- podczas drugiej oceny jest niedopuszczalne.

7. Zachwaszczenie:

1) plantacja powinna być praktycznie wolna od następujących chwastów: cykorii podróżnika, mniszka pospolitego, łoczygi pospolitej, komosy białej i przymiotna kanadyjskiego;

2) zachwaszczenie plantacji w stopniu ograniczającym prawidłowy rozwój nasion lub uniemożliwiającym prawidłowe dokonanie oceny stanowi podstawę do jej dyskwalifikacji.

VIII.

Warzywa pozostałe

1. Wykaz gatunków i obowiązujący najniższy stopień kwalifikacji

Lp.	Nazwa polska	Nazwa łacińska	Najniższy stopień kwalifikacji¹⁾ dla poszczególnych gatunków
1	Karczoch hiszpański (kard) i karczoch zwyczajny	Cynara cardunculus L.	C/1
2	Koper włoski (fenkuł)	Foeniculum vulgare Mill.	C/1
3	Szparag	Asparagus officinalis L.	C/1
4	Kukurydza cukrowa	Zea mays L. (partim)	C/1
5	Kukurydza pękająca	Zea mays L. (partim)	C/1

Objaśnienie

¹⁾ Jeżeli w upoważnieniu dla podmiotu prowadzącego obrót materiałem siewnym hodowca nie ustalił wyższego stopnia kwalifikacji.

2. Ocena stanu plantacji

Liczba wymaganych ocen stanu plantacji dla poszczególnych gatunków	Obowiązujący termin dokonania oceny
Jedna ocena stanu plantacji dla karczocha, kopru włoskiego i szparaga - w okresie pełni kwitnienia do początku wiązania nasion
Trzy oceny stanu plantacji dla kukurydzy cukrowej i kukurydzy pękającej
- pierwsza	w okresie poprzedzającym kwitnienie
- druga	w okresie od początku do pełni kwitnienia
- trzecia	w okresie końca kwitnienia składników rodzicielskich odmian mieszańcowych

3. Płodozmian

Plantacje nasienne roślin warzywnych z grupy pozostałe zakłada się na polu, na którym w ostatnim roku lub ostatnich latach poprzedzających rok założenia ocenianej plantacji nie były uprawiane rośliny wykluczające możliwość produkcji materiału siewnego danego gatunku, w szczególności innej odmiany tego samego lub tej samej odmiany, lecz niższego stopnia kwalifikacji, z uwzględnieniem specyfiki gatunku.

Plantacji nasiennych nie zakłada się na polu, na którym bezpośrednim przedplonem były rośliny z tej samej rodziny.

4. Izolacja przestrzenna

Lp.	Wyszczególnienie	Odległość nie mniejsza niż w metrach dla plantacji kategorii:
		elitarny	kwalifikowany i standard
1	Dla karczocha, kopru włoskiego i szparaga odległość od źródeł pyłku z danego rodzaju	500	300
2	Dla kukurydzy cukrowej i kukurydzy pękającej odległość plantacji, na której produkuje się nasiona:
	1) składników rodzicielskich od zasiewów innej odmiany lub formy kukurydzy niż ta, której pyłkiem mają być zapylone rośliny	300
	2) odmian mieszańcowych od zasiewów innej odmiany lub formy kukurydzy innej niż zapylacz danego mieszańca oraz odmian ustalonych od zasiewów innej odmiany lub formy kukurydzy	200

5. Zachwaszczenie oraz choroby i szkodniki

Występowanie chwastów oraz chorób i szkodników w stopniu utrudniającym prawidłowy rozwój nasion lub uniemożliwiającym właściwe wykonanie oceny stanowi podstawę do dyskwalifikacji plantacji.

W przypadku kukurydzy cukrowej i kukurydzy pękającej niedopuszczalne jest występowanie zgnilizny fuzaryjnej lub uwiądu bakteryjnego kukurydzy.

IX.

Cykoria korzeniowa1)

1. Nazwa gatunku i obowiązujący najniższy stopień kwalifikacji

Nazwa polska	Nazwa łacińska	Najniższy stopień kwalifikacji²⁾ dla poszczególnych gatunków
Cykoria	Cichorium intybus L.	C/1

Objaśnienia

¹⁾Materiał siewny odmian korzeniowych cykorii nie może być wytwarzany w kategorii standard i w badaniach rejestrowych podlega badaniom wartości gospodarczej odmiany (WGO).

²⁾Jeżeli w upoważnieniu dla podmiotu prowadzącego obrót materiałem siewnym hodowca nie ustalił wyższego stopnia kwalifikacji.

2. Ocena stanu plantacji

Liczba wymaganych ocen stanu plantacji dla poszczególnych gatunków	Obowiązujący termin dokonania oceny
Dwie oceny stanu plantacji:
- pierwsza - ocena plantacji, na której wytwarzane są wysadki	w okresie wytwarzania wysadków
- druga	w okresie od kwitnienia roślin do początku dojrzewania nasion

3. Płodozmian

Plantacje nasienne cykorii zakłada się na polu, na którym w ostatnim roku lub ostatnich latach poprzedzających rok założenia ocenianej plantacji nie były uprawiane rośliny wykluczające możliwość produkcji materiału siewnego danego gatunku, w szczególności innej odmiany tego samego gatunku lub tej samej odmiany, lecz niższego stopnia kwalifikacji, z uwzględnieniem specyfiki gatunku. Plantacji nasiennych cykorii nie należy zakładać na polu, na którym w okresie ostatnich dwóch lat uprawiano rośliny z tej samej rodziny. Plantacje nasienne powinny być wolne od takich roślin, które są samosiewami z poprzedniej uprawy.

4. Izolacja przestrzenna

Lp.	Wyszczególnienie	Odległość nie mniejsza niż w metrach dla plantacji
		materiału elitarnego	materiału kwalifikowanego
1	Odległość od źródeł pyłku z rodzaju Cichorium	1.000
2	Odległość od plantacji nasiennych innych odmian cykorii	600	300

5. Czystość odmianowa

Występowanie na plantacji roślin innych odmian cykorii jest niedopuszczalne.

6. Zachwaszczenie oraz choroby i szkodniki:

1) występowanie roślin dziko rosnącej cykorii jest niedopuszczalne;

2) wystąpienie chwastów oraz chorób i szkodników w stopniu utrudniającym prawidłowy rozwój nasion lub utrudniającym właściwe wykonanie oceny może być powodem dyskwalifikacji plantacji.

ZAŁĄCZNIK Nr 5

6 Tabela 1

Dopuszczalna wielkość partii oraz minimalna masa prób do badań dla roślin zbożowych

Gatunek		Wielkość partii¹⁾	Minimalna masa próby pobieranej z partii²⁾	Minimalna masa próby do oznaczeń określonych w kolumnach 4-10 tabeli 2 i tabeli 3
Gatunek		w tonach	w gramach
1		2	3	4
Avena nuda L. Owies nagi (owies nagoziarnowy)		30	1000	500
Avena sativa L. Owies zwyczajny, w tym owies bizantyjski		30	1000	500
Avena strigosa Schreb. Owies szorstki (owies owsik)		30	1000	500
Hordeum vulgare L. Jęczmień		30	1000	500
Triticum aestivum L. Pszenica zwyczajna		30	1000	500
Triticum durum Desf. Pszenica twarda		30	1000	500
Triticum spelta L. Pszenica orkisz		30	1000	500
Secale cereale L. Żyto		30	1000	500
xTriticosecale Wittm. ex A. Camus Pszenżyto		30	1000	500
Phalaris canariensis L. Mozga kanaryjska		10	400	200
Oryza sativa L. Ryż		30	500	500
Sorghum bicolor(L.) Moench Sorghum bicolor(L.) Moench x Sorghum sudanense (Piper) Stapf Sorgo		30	1000	900
Sorghum sudanense (Piper) Stapf Sorgo		10	1000	900
Zea mays L. Kukurydza	linie wsobne	40	250	250
Zea mays L. Kukurydza	pozostałe	40	1000	1000

Objaśnienia:

¹⁾ Wielkość partii może zostać przekroczona o nie więcej niż 5 % masy podanej w tabeli.

²⁾ Masa próby materiału siewnego przeznaczonego do okresowej oceny w zakresie zdolności kiełkowania powinna stanowić co najmniej 1/4 podanej masy próby.

Tabela 2

Wymagania jakościowe dla nasion roślin zbożowych¹⁾ kategorii elitarne

Gatunek	Minimalne kiełkowanie	Minimalna czystość analityczna	Maksymalna liczba nasion innych gatunków roślin, włączając czerwone nasiona Oryza sativa
	Minimalne kiełkowanie	Minimalna czystość analityczna	inne gatunki roślin łącznie, w tym kolumny: 5-10	czerwone nasiona Oryza sativa	inne gatunki zbóż	gatunki roślin innych niż zboża	Avena fatua, Avena sterilis, Lolium temulentum	Raphanus raphanistrum, Agrostemma githago	Panicum spp.
	% nasion czystych	% wagowy	sztuk nasion w próbce o masie określonej w kolumnie 4 tabeli 1
1	2	3	4	5	6	7	8	9	10
Avena nuda L. Owies nagi (owies nagoziarnowy)	75	99	4		1 (a)	3	0 (b)	1
Avena sativa L. Owies zwyczajny, w tym owies bizantyjski	85	99	4		1 (a)	3	0 (b)	1
Avena strigosa Schreb. Owies szorstki (owies owsik)	85	99	4		1 (a)	3	0 (b)	1
Hordeum vulgare L. Jęczmień	85 (c)	99	4		1 (a)	3	0 (b)	1
Triticum aestivum L. Pszenica zwyczajna	85	99	4		1 (a)	3	0 (b)	1
Triticum durum Desf. Pszenica twarda	85	99	4		1 (a)	3	0 (b)	1
Triticum spelta L. Pszenica orkisz	85	99	4		1 (a)	3	0 (b)	1
Phalaris canariensis L. Mozga kanaryjska	75	98	4		1 (a)		0 (b)
Oryza sativa L. Ryż	80	98	4	1					1
Secale cereale L. Żyto	85	98	4		1 (a)	3	0 (b)	1
Sorghum spp. Sorgo	80	98	0
xTriticosecale Wittm. ex A .Camus Pszenżyto	80	98	4		1 (a)	3	0 (b)	1
Zea mays L. Kukurydza	90	98	0

Tabela 3

Wymagania jakościowe dla nasion roślin zbożowych¹⁾ kategorii kwalifikowane

Gatunek		Minimalne kiełkowanie	Minimalna czystość analityczna	Maksymalna liczba nasion innych gatunków roślin, włączając czerwone nasiona Oryza sativa
		Minimalne kiełkowanie	Minimalna czystość analityczna	inne gatunki roślin łącznie, w tym kolumny 5-10	czerwone nasiona Oryza sativa	inne gatunki zbóż	gatunki roślin inne niż zboża	Avena fatua, Avena sterilis, Lolium temulentum	Raphanus raphanistrum, Agrostemma githago	Panicum spp.
		% nasion czystych	% wagowy	sztuk nasion w próbie o masie określonej w kolumnie 4 tabeli 1
1		2	3	4	5	6	7	8	9	10
Avena nuda L. Owies nagi (owies nagoziarnowy)		75	98	10		7	7	0 (b)	1
Avena sativa L. Owies zwyczajny, w tym owies bizantyjski		85 (c)	98	10		7	7	0 (b)	3
Avena strigosa Schreb. Owies szorstki (owies owsik)		85	98	10		7	7	0 (b)	3
Hordeum vulgare L. Jęczmień		85(c)	98	10		7	7	0 (b)	3
Triticum aestivum L. Pszenica zwyczajna		85	98	10		7	7	0 (b)	3
Triticum durum Desf. Pszenica twarda		85	98	10		7	7	0 (b)	3
Triticum spelta L. Pszenica orkisz		85	98	10		7	7	0 (b)	3
Phalaris canariensis L. Mozga kanaryjska		75	98	10		5		0 (b)
Oryza sativa L.	I rozmnożenie	80	98	10	3					3
Ryż	II rozmnożenie	80	98	15	5					3
Secale cereale L. Żyto		85	98	10		7	7	0 (b)	3
Sorghum spp. Sorgo		80	98	0
xTriticosecale Wittm. ex A. Camus Pszenżyto		80	98	10		7	7	0 (b)	3
Zea mays L. Kukurydza		90	98	0

Objaśnienia do tabel 2 i 3:

¹⁾ Dla materiału siewnego roślin zbożowych, przeznaczonego do dalszego rozmnażania tego materiału, oznacza się jego wilgotność, która dla roślin zbożowych wynosi nie więcej niż 15 %, z wyjątkiem kukurydzy, sorga i mozgi kanaryjskiej, dla których wynosi ona nie więcej niż 14 %.

(a) Jeżeli w badanej próbce stwierdzono obecność dwóch ziarniaków, to drugiego ziarniaka nie uważa się za zanieczyszczenie, o ile w drugiej próbce o tej samej masie nie stwierdzono obecności ziarniaków innych gatunków zbóż.

(b) Jeżeli w badanej próbce stwierdzono obecność jednego ziarniaka Avena fatua, Avena sterylis lub Lolium temulentum, to nie uważa się go za zanieczyszczenie, o ile w drugiej próbce o tej samej masie nie stwierdzono obecności nasion tych gatunków.

(c) W przypadku nieoplewionych odmian jęczmienia oraz odmian owsa nagiego minimalna zdolność kiełkowania wynosi 75 % czystych nasion i dla tych odmian na urzędowej etykiecie umieszcza się napis: minimalna zdolność kiełkowania 75 %.

Choroby i szkodniki:

1) materiał siewny roślin zbożowych powinien być praktycznie wolny od organizmów szkodliwych mających wpływ na jego jakość oraz wolny od szkodników magazynowych;

2) szczegółowe wymagania dotyczące Claviceps purpurea.

Tabela 4

Materiał siewny		Maksymalna liczba sklerocjów lub ich fragmentów Claviceps purpurea w próbie o masie określonej w kolumnie 4 tabeli 1
1		2
zbóż, z wyjątkiem odmian mieszańcowych żyta	kategorii elitarne	1
zbóż, z wyjątkiem odmian mieszańcowych żyta	kategorii kwalifikowane	3
odmian mieszańcowych żyta	kategorii elitarne	1
odmian mieszańcowych żyta	kategorii kwalifikowane	4¹⁾

Objaśnienie

¹⁾ Jeżeli w badanej próbie stwierdzono obecność pięciu sklerocjów lub ich fragmentów, to uznaje się ten wynik za zgodny z wymaganiami, jeżeli w drugiej próbie o tej samej masie nie stwierdzono więcej niż 4 sklerocja lub ich fragmenty.

Tabela 5

Dopuszczalna wielkość partii oraz minimalna masa prób do badań dla roślin pastewnych

Gatunek		Wielkość partii¹⁾	Minimalna masa próby pobieranej z partii²⁾	Minimalna masa próby do oznaczeń określonych w tabeli 6 kolumnach 6-14 oraz tabeli 7 kolumnach 12-14
Gatunek		w tonach	w gramach
1		2	3	4
ROŚLINY BOBOWATE GRUBONASIENNE (ROŚLINY STRĄCZKOWE)
Vicia faba L. (partim) Bobik		30	1000	1000
Pisum sativum L. (partim) Groch siewny		30	1000	1000
Lupinus albus L. Łubin biały		30	1000	1000
Lupinus angustifolius L. Łubin wąskolistny		30	1000	1000
Lupinus luteus L. Łubin żółty		30	1000	1000
Vicia pannonica Crantz Wyka pannońska		30	1000	1000
Vicia sativa L. Wyka siewna		30	1000	1000
Vicia villosa Roth Wyka kosmata		30	1000	1000
ROŚLINY BOBOWATE DROBNONASIENNE (ROŚLINY MOTYLKOWATE DROBNONASIENNE)
Hedysarum coronarium L.	- owoce	10	1000	300
Siekiernica włoska	- nasiona	10	400	120
Lotus corniculatus L. Komonica zwyczajna		10	200	30
Medicago lupulina L. Lucerna chmielowa		10	300	50
Medicago sativa L. Lucerna siewna		10	300	50
Medicago x varia T. Martyn Lucerna mieszańcowa (lucerna piaskowa)		10	300	50
Onobrychis viciifolia Scop.	- owoce	10	600	600
Esparceta siewna	- nasiona	10	400	400
Trifolium alexandrinum L. Koniczyna aleksandryjska (koniczyna egipska)		10	400	60
Trifolium hybridum L. Koniczyna białoróżowa (koniczyna szwedzka)		10	200	20
Trifolium incarnatum L. Koniczyna krwistoczerwona (inkarnatka)		10	500	80
Trifolium pratense L. Koniczyna łąkowa (koniczyna czerwona)		10	300	50
Trifolium repens L. Koniczyna biała		10	200	20
Trifolium resupinatum L. Koniczyna perska		10	200	20
Trigonella foenum-graecum L. Kozieradka pospolita (koniczyna grecka)		10	500	450
Galega orientalis Lam. Rutwica wschodnia		10	250	200
WIECHLINOWATE (TRAWY)
Agrostis canina L. Mietlica psia		10	50	5
Agrostis gigantea Roth Mietlica biaława		10	50	5
Agrostis stolonifera L. Mietlica rozłogowa		10	50	5
Agrostis capillaris L. Mietlica pospolita		10	50	5
Alopecurus pratensis L. Wyczyniec łąkowy		10	100	30
Arrhenatherum elatius (L.) P. Beauv. ex J. Presl & C. Presl Rajgras wyniosły (rajgras francuski)		10	200	80
Bromus catharticus Vahl Stokłosa uniolowata		10	200	200
Bromus sitchensis Trin. Stokłosa alaskańska		10	200	200
Cynodon dactylon (L.) Pers. Cynodon palczasty		10	50	5
Dactylis glomerata L. Kupkówka pospolita		10	100	30
Festuca arundinacea Schreber Kostrzewa trzcinowa		10	100	50
Festuca filiformis Pourr. Kostrzewa nitkowata		10	100	30
Festuca ovina L. Kostrzewa owcza		10	100	30
Festuca pratensis Huds. Kostrzewa łąkowa		10	100	50
Festuca rubra L. Kostrzewa czerwona		10	100	30
Festuca trachyphylla (Hack.) Krajina Kostrzewa murawowa		10	100	30
X Festulolium Asch. & Graebn. Festulolium		10	200	60
Lolium multiflorum Lam. Życica wielokwiatowa (rajgras włoski i rajgras holenderski)		10	200	60
Lolium perenne L. Życica trwała (rajgras angielski)		10	200	60
Lolium x boucheanum Kunth Życica mieszańcowa (rajgras oldenburski)		10	200	60
Phalaris aquatica L. Mozga Herdinga		10	100	50
Phleum nodosum L. Tymotka kolankowata		10	50	10
Phleum pratense L. Tymotka łąkowa		10	50	10
Poa annua L. Wiechlina roczna		10	50	10
Poa nemoralis L. Wiechlina gajowa		10	50	5
Poa palustris L. Wiechlina błotna		10	50	5
Poa pratensis L. Wiechlina łąkowa		10	50	5
Poa trivalis L. Wiechlina zwyczajna		10	50	5
Trisetum flavescens (L.) P. Beauv. Konietlica łąkowa		10	50	5
INNE GATUNKI
Brassica napus L. var. napobrassica (L.) Rchb. Brukiew pastewna		10	200	100
Brassica oleracea L. convar. acephala (DC.) Alef. var. medullosa Thell. + var. viridis L Kapusta pastewna		10	200	100
Phacelia tanacetifolia Benth. Facelia błękitna		10	300	40
Raphanus sativus L. var. oleiformis Pers. Rzodkiew oleista		10	300	300

Objaśnienia:

¹⁾ Wielkość partii może zostać przekroczona nie więcej niż o 5 % masy podanej w tabeli.

²⁾ Masa próby materiału siewnego przeznaczonego do okresowej oceny zdolności kiełkowania powinna stanowić co najmniej 1/4 podanej masy próby.

Tabela 6

Wymagania jakościowe dla nasion roślin pastewnych kategorii elitarne

Gatunek				Czystość analityczna									Maksymalna zawartość nasion innych gatunków roślin w próbce o masie określonej w kolumnie 4 tabeli 5
	Minimalna zdolność kiełkowania		Maksymalna zawartość nasion twardych	minimalna czystość analityczna	maksymalna zawartość nasion innych gatunków roślin												Nasiona łubinu innej barwy lub gorzkie
	Minimalna zdolność kiełkowania		Maksymalna zawartość nasion twardych	minimalna czystość analityczna	łącznie		jednego gatunku	Elytrigia repens (Agropyron repens)	Alopecurus myosuroides	Melilotus spp.	Raphanus raphanistrum	Sinapis arvensis	Avena fatua, Avena sterilis		Cuscuta spp.	Rumex spp., oprócz Rumex acetosella i Rumex maritimus	Nasiona łubinu innej barwy lub gorzkie
	% nasion czystych			% wagowy			liczba nasion w próbce
1	2		3	4		5	6	7	8	9	10	11	12		13	14	15
ROŚLINY BOBOWATE GRUBONASIENNE (ROŚLINY STRĄCZKOWE)
Vicia faba L. (partim) Bobik	80 (a)(b)		5	98		0,3	20			0 (u)			0		0 (j)	2
Pisum sativum L. (partim) Groch siewny	80 (a)			98		0,3	20			0 (u)			0		0 (j)	2
Lupinus albus L. Łubin biały	80 (a)(b)		20	98		0,3	20			0 (u)			0 (i)		0 (j)	2	(o) (p)
Lupinus angustifolius L. Łubin wąskolistny	75 (a)(b)		20	98		0,3	20			0 (u)			0 (i)		0 (j)	2	(o) (p)
Lupinus luteus L. Łubin żółty	80 (a)(b)		20	98		0,3	20			0 (u)			0 (i)		0 (j)	2	(o) (p)
Vicia pannonica Crantz Wyka panońska	85 (a)(b)		20	98		0,3	20			0 (u)			0 (i)		0 (j)	2
Vicia sativa L. Wyka siewna	85 (a)(b)		20	98		0,3	20			0 (u)			0 (i)		0 (j)	2
Vicia villosa Roth Wyka kosmata	85 (a)(b)		20	98		0,3	20			0 (u)			0 (i)		0 (j)	2
ROŚLINY BOBOWATE DROBNONASIENNE (ROŚLINY MOTYLKOWATE DROBNONASIENNE)
Hedysarum coronarium L. Siekiernica włoska		75 (a)(b)	30	95		0,3	20			0 (w)				0	0 (k)	2
Lotus corniculatus L. Komonica zwyczajna		75 (a)(b)	40	95		0,3	20			0 (w)				0	0 (l)(m)	3
Medicago lupulina L. Lucerna chmielowa		80 (a)(b)	20	97		0,3	20			0 (w)				0	0 (l)(m)	5
Medicago sativa L. Lucerna siewna		80 (a)(b)	40	97		0,3	20			0 (w)				0	0 (l)(m)	3
Medicago x varia T. Martyn Lucerna mieszańcowa (lucerna piaskowa)		80 (a)(b)	40	97		0,3	20			0 (w)				0	0 (l)(m)	3
Onobrychis viciifolia Scop. Esparceta siewna		75 (a)(b)	20	95		0,3	20			0 (u)				0	0 (j)	2
Trifolium alexandrinum L. Koniczyna aleksandryjska (koniczyna egipska)		80 (a)(b)	20	97		0,3	20			0 (w)				0	0 (l)(m)	3
Trifolium hybridum L. Koniczyna białoróżowa (koniczyna szwedzka)		80 (a)(b)	20	97		0,3	20			0 (w)				0	0 (l)(m)	3
Trifolium incarnatum L. Koniczyna krwistoczerwona (inkarnatka)		75 (a)(b)	20	97		0,3	20			0 (w)				0	0 (l)(m)	3
Trifolium pratense L. Koniczyna łąkowa (koniczyna czerwona)		80 (a)(b)	20	97		0,3	20			0 (w)				0	0 (l)(m)	5
Trifolium repens L. Koniczyna biała		80 (a)(b)	40	97		0,3	20			0 (w)				0	0 (l)(m)	5
Trifolium resupinatum L. Koniczyna perska		80 (a)(b)	20	97		0,3	20			0 (w)				0	0 (l)(m)	3
Trigonella foenum-graecum L. Kozieradka pospolita (koniczyna grecka)		80 (a)		95		0,3	20			0 (u)				0	0 (j)	2
Galega orientalis Lam. Rutwica wschodnia		60	40	97		0,3	20			0 (w)				0	0 (l)(m)	2
WIECHLINOWATE (TRAWY)
Agrostis canina L. Mietlica psia		75 (a)		90		0,3	20	1	1					0	0 (j)(k)	1
Agrostis gigantea Roth Mietlica biaława		80 (a)		90		0,3	20	1	1					0	0 (j)(k)	1
Agrostis stolonifera L. Mietlica rozłogowa		75 (a)		90		0,3	20	1	1					0	0 (j)(k)	1
Agrostis capillaris L. Mietlica pospolita		75 (a)		90		0,3	20	1	1					0	0 (j)(k)	1
Alopecurus pratensis L. Wyczyniec łąkowy		70 (a)		75		0,3	20 (r)	5	5					0	0 (j)(k)	2
Arrhenatherum elatius (L.) P. Beauv. ex J. Presl & C. Presl Rajgras wyniosły (rajgras francuski)		75 (a)		90		0,3	20 (r)	5	5					0 (g)	0 (j)(k)	2
Bromus catharticus Vahl Stokłosa uniolowata		75 (a)		97		0,4	20	5	5					0 (g)	0 (j)(k)	5
Bromus sitchensis Trin. Stokłosa alaskańska		75 (a)		97		0,4	20	5	5					0 (g)	0 (j)(k)	5
Cynodon dactylon (L.) Pers. Cynodon palczasty		70 (a)		90		0,3	20 (r)	1	1					0	0 (j)(k)	1
Dactylis glomerata L. Kupkówka pospolita		80 (a)		90		0,3	20 (r)	5	5					0	0 (j)(k)	2
Festuca arundinacea Schreber Kostrzewa trzcinowa		80 (a)		95		0,3	20 (r)	5	5					0	0 (j)(k)	2
Festuca filiformis Pourr. Kostrzewa nitkowata		75 (a)		85		0,3	20 (r)	5	5					0	0 (j)(k)	2
Festuca ovina L. Kostrzewa owcza		75 (a)		85		0,3	20 (r)	5	5					0	0 (j)(k)	2
Festuca pratensis Huds. Kostrzewa łąkowa		80 (a)		95		0,3	20 (r)	5	5					0	0 (j)(k)	2
Festuca rubra L. Kostrzewa czerwona		75 (a)		90		0,3	20 (r)	5	5					0	0 (j)(k)	2
Festuca trachyphylla (Hack.) Krajina Kostrzewa murawowa		75 (a)		85		0,3	20 (r)	5	5					0	0 (j)(k)	2
x Festulolium Asch. & Graebn. Festulolium		75 (a)		96		0,3	20 (r)	5	5					0	0 (j)(k)	2
Lolium multiflorum Lam. Życica wielokwiatowa (rajgras włoski)		75 (a)		96		0,3	20 (r)	5	5					0	0 (j)(k)	2
Lolium perenne L. Życica trwała (rajgras angielski)		80 (a)		96		0,3	20 (r)	5	5					0	0 (j)(k)	2
Lolium x boucheanum Kunth Życica mieszańcowa (rajgras oldenburski)		75 (a)		96		0,3	20 (r)	5	5					0	0 (j)(k)	2
Phalaris aquatica L. Mozga Hardinga		75 (a)		96		0,3	20	5	5					0	0 (j)(k)	2
Phleum nodosum L. Tymotka kolankowata		80 (a)		96		0,3	20	1	1					0	0 (k)	2
Phleum pratense L. Tymotka łąkowa		80 (a)		96		0,3	20	1	1					0	0 (k)	2
Poa annua L. Wiechlina roczna		75 (a)		85		0,3	20 (s)	1	1					0	0 (j)(k)	1
Poa nemoralis L. Wiechlina gajowa		75 (a)		85		0,3	20 (s)	1	1					0	0 (j)(k)	1
Poa palustris L. Wiechlina błotna		75 (a)		85		0,3	20 (s)	1	1					0	0 (j)(k)	1
Poa pratensis L. Wiechlina łąkowa		75 (a)		85		0,3	20 (s)	1	1					0	0 (j)(k)	1
Poa trivialis L. Wiechlina zwyczajna		75 (a)		85		0,3	20 (s)	1	1					0	0 (j)(k)	1
Trisetum flavescens (L.) P. Beauv. Konietlica łąkowa		70 (a)		75		0,3	20 (t)	1	1					0 (h)	0 (j)(k)	1
INNE GATUNKI
Brassica napus L. var. napobrassica (L.) Rchb. Brukiew pastewna		80 (a)		98		0,3	20							0	0 (j)(k)	2
Brassica oleracea L. convar. acephala (DC.) Alef. var. medullosa Kapusta pastewna		75 (a)		98		0,3	20							0	0 (j)(k)	3
Phacelia tanacetifolia Benth. Facelia błękitna		80 (a)		96		0,3	20							0	0 (j)(k)
Raphanus sativus L. var. oleiformis Pers. Rzodkiew oleista		80 (a)		97		0,3	20							0	0 (j)	2

Tabela 7

Wymagania jakościowe dla nasion roślin pastewnych kategorii kwalifikowane

Gatunek

Minimalna zdolność kiełkowania

Maksymalna zawartość nasion twardych

Czystość analityczna

Maksymalna zawartość nasion innych gatunków roślin w próbce o masie określonej w kolumnie 4 tabeli 5

Nasiona łubinu innej barwy lub gorzkie

minimalna czystość analityczna

maksymalna zawartość nasion innych gatunków roślin

łącznie

jednego gatunku

Elytrigia repens (Agropyron repens)

Alopecurus myosuroides

Melilotus spp.

Raphanus rapha-nistrum

Sinapis arvensis

Avena fatua, Avena sterilis

Cuscuta spp.

Rumex spp., oprócz Rumex acetosella i Rumex maritimus

% nasion czystych

% wagowy

liczba nasion w próbie

ROŚLINY BOBOWATE GRUBONASIENNE (ROŚLINY STRĄCZKOWE)

Vicia faba L. (partim)

Bobik

80 (a)(b)

0,5

0,3

0 (j)

5 (n)

Pisum sativum L. (partim)

Groch siewny

80 (a)

0,5

0,3

0 (j)

5 (n)

Lupinus albus L.

Łubin biały

80 (a)(b)

0,5 (e)

0,3 (e)

0,3

0 (i)

0 (j)

5 (n)

(o) (v)

Lupinus angustifolius L.

Łubin wąskolistny

75 (a)(b)

0,5 (e)

0,3 (e)

0,3

0 (i)

0 (j)

5 (n)

(o) (v)

Lupinus luteus L.

Łubin żółty

80 (a)(b)

0,5 (e)

0,3 (e)

0,3

0 (i)

0 (j)

5 (n)

(o) (v)

Vicia pannonica Crantz

Wyka pannońska

85 (a)(b)

1,0 (e)

0,5 (e)

0,3

0 (i)

0 (j)

5 (n)

Vicia sativa L.

Wyka siewna

85 (a)(b)

1,0 (e)

0,5 (e)

0,3

0 (i)

0 (j)

5 (n)

Vicia villosa Roth Wyka kosmata

85 (a)(b)

1,0 (e)

0,5 (e)

0,3

0 (i)

0 (j)

5 (n)

ROŚLINY BOBOWATE DROBNONASIENNE (ROŚLINY MOTYLKOWATE DROBNONASIENNE)

Hedysarum coronarium L. Siekiernica włoska

75 (a)(b)

2,5

1,0

0,3

0 (k)

Lotus corniculatus L.

Komonica zwyczajna

75 (a)(b)

1,8 (d)

1,0 (d)

0,3

0 (l)(m)

Medicago lupulina L.

Lucerna chmielowa

80 (a)(b)

1,5

1,0

0,3

0 (l)(m)

Medicago sativa L.

Lucerna siewna

80 (a)(b)

1,5

1,0

0,3

0 (l)(m)

Medicago x varia T. Martyn

Lucerna mieszańcowa (lucerna piaskowa)

80 (a)(b)

1,5

1,0

0,3

0 (l)(m)

Onobrychis viciifolia Scop.

Esparceta siewna

75 (a)(b)

2,5

1,0

0,3

0 (j)

Trifolium alexandrinum L.

Koniczyna aleksandryjska (koniczyna egipska)

80 (a)(b)

1,5

1,0

0,3

0 (l)(m)

Trifolium hybridum L.

Koniczyna białoróżowa (koniczyna szwedzka)

80 (a)(b)

1,5

1,0

0,3

0 (l)(m)

Trifolium incarnatum L.

Koniczyna krwistoczerwona (inkarnatka)

75 (a)(b)

1,5

1,0

0,3

0 (l)(m)

Trifolium pratense L.

Koniczyna łąkowa (koniczyna czerwona)

80 (a)(b)

1,5

1,0

0,3

0 (l)(m)

Trifolium repens L

Koniczyna biała

80 (a)(b)

1,5

1,0

0,3

0 (l)(m)

Trifolium resupinatum L.

Koniczyna perska

80 (a)(b)

1,5

1,0

0,3

0 (l)(m)

Trigonella foenum-graecum L.

Kozieradka pospolita

(koniczyna grecka)

80 (a)

1,0

0,5

0,3

0 (j)

Galega orientalis Lam.

Rutwica wschodnia

2,0

1,5

0,3

0 (l)(m)

WIECHLINOWATE (TRAWY)

Agrostis canina L.

Mietlica psia

75 (a)

2,0

1,0

0,3

0 (j)(k)

2 (n)

Agrostis gigantea Roth

Mietlica biaława

80 (a)

2,0

1,0

0,3

0 (j)(k)

2 (n)

Agrostis stolonifera L.

Mietlica rozłogowa

75 (a)

2,0

1,0

0,3

0 (j)(k)

2 (n)

Agrostis capillaris L.

Mietlica pospolita

75 (a)

2,0

1,0

0,3

0 (j)(k)

2 (n)

Alopecurus pratensis L. Wyczyniec łąkowy

70 (a)

2,5

1,0 (f)

0,3

0 (j)(k)

5 (n)

Arrhenatherum elatius (L.) P. Beauv. ex J. Presl & C. Presl

Rajgras wyniosły (rajgras francuski)

75 (a)

3,0

1,0 (f)

0,5

0,3

0 (g)

0 (j)(k)

5 (n)

Bromus catharticus Vahl

Stokłosa uniolowata

75 (a)

1,5

1,0

0,5

0,3

0 (g)

0 (j)(k)

10 (n)

Bromus sitchensis Trin.

Stokłosa alaskańska

75 (a)

1,5

1,0

0,5

0,3

0 (g)

0 (j)(k)

10 (n)

Cynodon dactylon (L) Pers.

Cynodon palczasty

70 (a)

2,0

1,0

0,3

0 (j)(k)

Dactylis glomerata L.

Kupkówka pospolita

80 (a)

1,5

1,0

0,3

0 (j)(k)

5 (n)

Festuca arundinacea Schreber

Kostrzewa trzcinowa

80 (a)

1,5

1,0

0,5

0,3

0 (j)(k)

5 (n)

Festuca filiformis Pourr.

Kostrzewa nitkowata

75 (a)

2,0

1,0

0,5

0,3

0 (j)(k)

5 (n)

Festuca ovina L. Kostrzewa owcza

75 (a)

2,0

1,0

0,5

0,3

0 (j)(k)

5 (n)

Festuca pratensis Huds.

Kostrzewa łąkowa

80 (a)

1,5

1,0

0,5

0,3

0 (j)(k)

5 (n)

Festuca rubra L.

Kostrzewa czerwona

75 (a)

1,5

1,0

0,5

0,3

0 (j)(k)

5 (n)

Festuca trachyphylla (Hack.) Krajina

Kostrzewa murawowa

75 (a)

2,0

1,0

0,5

0,3

0 (j)(k)

5(n)

x Festulolium Asch. & Graebn.

Festulolium

75 (a)

1,5

1,0

0,5

0,3

0 (j)(k)

5 (n)

Lolium multiflorum Lam.

Życica wielokwiatowa (rajgras włoski)

75 (a)

1,5

1,0

0,5

0,3

0 (j)(k)

5 (n)

Lolium perenne L. Życica trwała (rajgras angielski)

80 (a)

1,5

1,0

0,5

0,3

0 (j)(k)

5 (n)

Lolium x boucheanum Kunth

Życica mieszańcowa (rajgras oldenburski)

75 (a)

1,5

1,0

0,5

0,3

0 (j)(k)

5 (n)

Phalaris aquatica L.

Mozga Hardinga

75 (a)

1,5

1,0

0,3

0 (j)(k)

Phleum nodosum L.

Tymotka kolankowata

80 (a)

1,5

1,0

0,3

0 (k)

Phleum pratense L.

Tymotka łąkowa

80 (a)

1,5

1,0

0,3

0 (k)

Poa annua L.

Wiechlina roczna

75 (a)

2,0 (c)

1,0 (c)

0,3

0 (j)(k)

5 (n)

Poa nemoralis L.

Wiechlina gajowa

75 (a)

2,0 (c)

1,0 (c)

0,3

0 (j)(k)

2 (n)

Poa palustris L. Wiechlina błotna

75 (a)

2,0 (c)

1,0 (c)

0,3

0 (j)(k)

2 (n)

Poa pratensis L.

Wiechlina łąkowa

75 (a)

2,0 (c)

1,0 (c)

0,3

0 (j)(k)

2 (n)

Poa trivialis L.

Wiechlina zwyczajna

75 (a)

2,0 (c)

1,0 (c)

0,3

0 (j)(k)

2 (n)

Trisetum flavescens (L.) P. Beauv.

Konietlica łąkowa

70 (a)

3,0

1,0 (f)

0,3

0 (h)

0 (j)(k)

2 (n)

INNE GATUNKI

Brassica napus L. var. napobrassica (L.) Rchb.

Brukiew pastewna

80 (a)

1,0

0,5

0,3

0 (j)(k)

Brassica oleracea L. convar. acephala (DC.) Alef. var. modullosa

Kapusta pastewna

75 (a)

1,0

0,5

0,3

0 (j)(k)

Phacelia tanacetifolia Benth.

Facelia błękitna

80 (a)

1,0

0,5

0 (j)(k)

Raphanus sativus L. var. oleiformis Pers.

Rzodkiew oleista

80 (a)

1,0

0,5

0,3

0 (j)

Objaśnienia:

(a) Wszystkie świeże, zdrowe nasiona, które nie skiełkowały po zastosowaniu zabiegów wstępnych, uznaje się za nasiona skiełkowane.

(b) Nasiona twarde uznaje się za nasiona zdolne do kiełkowania, jednak w liczbie nie większej niż podano w kolumnie 3 tabel 6 i 7.

(c) Nasion innych gatunków Poa spp., których łączna zawartość nie jest większa niż 0,8 % wagowego, nie uważa się za zanieczyszczenie.

(d) Nasion Trifolium pratense, których zawartość nie jest większa niż 1 % wagowy, nie uważa się za zanieczyszczenie.

(e) Nasion gatunków: Lupinus albus, Lupinus angustifolius, Lupinus luteus, Pisum sativum, Vicia faba, Vicia pannonica, Vicia sativa, Vicia villosa, których łączna zawartość oznaczona w próbce materiału siewnego jednego z tych gatunków nie jest większa niż 0,5 % wagowego, nie uważa się za zanieczyszczenie.

(f) Zawartości procentowej nasion jednego gatunku nie stosuje się do nasion gatunków Poa spp.

(g) Dopuszczalnej łącznej zawartości dwóch ziarniaków Avena fatua i Avena sterilis w próbce o masie określonej w kolumnie 4 tabeli 1 nie uważa się za zanieczyszczenie, jeśli druga próbka o tej samej masie jest wolna od ziarniaków tych gatunków.

(h) Jeżeli w badanej próbce stwierdzono obecność jednego nasienia Avena fatua i Avena sterilis, to nie uważa się go za zanieczyszczenie, o ile w drugiej próbce o dwukrotnie większej masie nie stwierdzono obecności nasion tych gatunków.

(i) Nie określa się obecności nasion Avena fatua i Avena sterilis, jeżeli nie ma wątpliwości, że oceniany materiał siewny jest wolny od nasion tych gatunków.

(j) Nie określa się obecności nasion Cuscuta spp., jeżeli nie ma wątpliwości, że oceniany materiał siewny jest wolny od nasion tych gatunków.

(k) Jeżeli w badanej próbce stwierdzono obecność jednego nasienia Cuscuta spp., to nie uważa się go za zanieczyszczenie, o ile w drugiej próbce o takiej samej masie nie stwierdzono obecności nasion Cuscuta spp.

(l) Oznaczanie obecności nasion Cuscuta spp. wykonuje się na próbce o dwukrotnie większej masie niż określona w kolumnie 4 tabeli 5.

(m) Jeżeli w badanej próbce stwierdzono obecność jednego nasienia Cuscuta spp., to nie uważa się go za zanieczyszczenie, o ile w drugiej próbce o dwukrotnie większej masie nie stwierdzono obecności nasion Cuscuta spp.

(n) Nie określa się obecności nasion gatunków Rumex innych niż Rumex acetosella i Rumex maritimus, jeżeli nie ma wątpliwości, że oceniany materiał siewny jest wolny od nasion tych gatunków.

(o) Procent liczbowy nasion łubinu o innym zabarwieniu nie powinien przekraczać:

- w materiale siewnym łubinu gorzkiego - 2,

- w materiale siewnym łubinów innych niż gorzki - 1.

(p) Procent liczbowy nasion łubinów gorzkich w odmianach innych niż łubin gorzki nie powinien przekraczać 1.

(r) Nasion gatunków Poa spp., łącznie do 80 sztuk, nie uważa się za zanieczyszczenie.

(s) Nie dotyczy nasion gatunków Poa spp., o ile w badanej próbie łączna liczba nasion gatunków Poa spp. innych niż oceniany nie przekracza 500 sztuk.

(t) Liczby stwierdzonych nasion gatunków Poa spp., łącznie nie więcej niż 20 sztuk nasion, nie uważa się za zanieczyszczenie.

(u) Nie określa się obecności nasion gatunków Melilotus spp., jeżeli nie ma wątpliwości, że oceniany materiał siewny jest wolny od nasion tych gatunków.

(w) Jeżeli w badanej próbce stwierdzono obecność jednego nasienia Melilotus spp., to nie uważa się go za zanieczyszczenie, o ile w drugiej próbce o dwukrotnie większej masie nie stwierdzono obecności nasion Melilotus spp.

(v) Procent liczbowy nasion łubinów gorzkich w odmianach innych niż łubin gorzki nie powinien przekraczać 2,5.

Tabela 8

Dopuszczalna wielkość partii oraz minimalna masa próbek do badań roślin oleistych i włóknistych

Gatunek	Wielkość partii¹⁾	Minimalna masa próby pobieranej z partii^2),3)	Masa próby do oznaczania określonego w kolumnach 5-11 tabel 9 i 10
Gatunek	w tonach	w gramach
1	2	3	4
Arachis hypogaea L. Orzech arachidowy	30	1000	1000
Brassica rapa L. var. silvestris (Lam.) Briggs Rzepik	10	200	70
Brassica juncea (L.) Czern. Gorczyca sarepska	10	100	40
Brassica napus L. (partim) Rzepak	10	200	100
Brassica nigra (L.) Koch Gorczyca czarna	10	100	40
Cannabis sativa L. Konopie	10	600	600
Carthamus tinctorius L. Krokosz barwierski	25	900	900
Carum carvi L. Kminek zwyczajny	10	200	80
Gossypium spp. Bawełna	25	1000	1000
Helianthus annuus L. Słonecznik	25	1000	1000
Linum usitatissimum L. Len zwyczajny	10	300	150
Papaver somniferum L. Mak	10	50	10
Sinapis alba L. Gorczyca biała	10	400	200
Glycine max (L.) Merrill Soja	30	1000	1000

Objaśnienia:

¹⁾ Dopuszczalna wielkość partii nie może zostać przekroczona o więcej niż 5 % masy podanej w tabeli.

²⁾ Próbę materiału siewnego przeznaczonego do badań pod kątem zawartości organizmów genetycznie zmodyfikowanych pobiera się zgodnie z międzynarodowo uznaną metodyką; wielkość próby powinna być nie mniejsza niż 3 000 sztuk nasion.

³⁾ Masa próby materiału siewnego przeznaczonego do okresowej oceny w zakresie zdolności kiełkowania powinna stanowić co najmniej 1/4 podanej masy próby.

Tabela 9

Wymagania jakościowe dla nasion kategorii elitarne

Gatunek		Minimalna zdolność kiełkowania % nasion czystych	Czystość nasion		Maksymalna zawartość nasion innych gatunków roślin w próbie o masie określonej w kolumnie 4 tabeli 1							Maksymalna zawartość nasion Orobanche
		Minimalna zdolność kiełkowania % nasion czystych	minimalna czystość analityczna	maksymalna zawartość nasion obcych gatunków	inne gatunki roślin łącznie, w tym kolumny 6-11	Avena fatua, Avena sterilis	Cuscuta spp.	Raphanus raphanistrum	Rumex spp. inne niż Rumex acetosella	Alopecurus myosuroides	Lolium remotum	Maksymalna zawartość nasion Orobanche
			% wagowy		sztuk nasion w próbce o masie określonej w kolumnie 4 tabeli 1
1		2	3	4	5	6	7	8	9	10	11	12
Arachis hypogaea Orzech ziemny		70	99	-	5	0	0 (b)
Brassica spp. Rzepak, rzepik oraz gorczyca czarna i sarepska		85	98	0,3	-	0	0 (b)(c)	10	2
Cannabis sativa Konopie siewne		75	98	-	30 (a)	0	0 (b)					(d)
Carthamus tinctorius Krokosz barwierski		75	98	-	5	0	0 (b)					(d)
Carum carvi Kminek zwyczajny		70	97	-	25 (a)	0	0 (b)(c)	10		3
Gossypium spp. Bawełna		80	98	-	15	0	0 (b)
Helianthus annuus Słonecznik		85	98	-	5	0	0 (b)
Linum usitatissimum	odmiany włókniste	92	99	-	15	0	0 (b)(c)			4	2
Len zwyczajny	odmiany oleiste	85	99	-	15	0	0 (b)(c)			4	2
Papaver somniferum Mak lekarski		80	98	-	25 (a)	0	0 (b)(c)
Sinapis alba Gorczyca biała		85	98	0,3	-	0	0 (b)(c)	10	2
Glycine max. Soja zwyczajna		80	98	-	5	0	0 (b)

Tabela 10

Wymagania jakościowe dla nasion kategorii kwalifikowane

Gatunek		Minimalna zdolność kiełkowania % nasion czystych	Czystość nasion		Maksymalna zawartość nasion innych gatunków roślin w próbie o masie określonej w kolumnie 4 tabeli 1							Maksymalna zawartość nasion Orobanche spp.
		Minimalna zdolność kiełkowania % nasion czystych	minimalna czystość analityczna	maksymalna zawartość nasion obcych gatunków	inne gatunki roślin łącznie, w tym kolumny 6-11	Avena fatua, Avena sterilis	Cuscuta spp.	Raphanus raphanistrum	Rumex spp. inne niż Rumex acetosella	Alopecurus myosuroides	Lolium remotum	Maksymalna zawartość nasion Orobanche spp.
			% wagowy		sztuk nasion w próbce o masie określonej w kolumnie 4 tabeli 8
1		2	3	4	5	6	7	8	9	10	11	12
Arachis hypogaea Orzech ziemny		70	99	-	5	0	0 (b)
Brassica spp. Rzepak, rzepik oraz gorczyca czarna i sarepska		85	98	0,3	-	0	0 (b)(c)	10	5
Cannabis sativa Konopie siewne		75	98	-	30 (a)	0	0 (b)					(d)
Carthamus tinctorius Krokosz barwierski		75	98	-	5	0	0 (b)					(d)
Carum carvi Kminek zwyczajny		70	97	-	25 (a)	0	0 (b)(c)	10		3
Gossypium spp. Bawełna		80	98	-	15	0	0 (b)
Helianthus annuus Słonecznik		85	98	-	5	0	0 (b)
Linum usitatissimum	odmiany włókniste	92	99	-	15	0	0 (b)(c)			4	2
Len zwyczajny	odmiany oleiste	85	99	-	15	0	0 (b)(c)			4	2
Papaver somniferum Mak lekarski		80	98	-	25 (a)	0	0 (b)(c)
Sinapis alba Gorczyca biała		85	98	0,3	-	0	0 (b)(c)	10	5
Glycine max. Soja zwyczajna		80	98	-	5	0	0 (b)

Objaśnienia do tabel 9 i 10:

(a) Nie określa się całkowitej zawartości nasion innych gatunków, jeżeli nie ma wątpliwości, że oceniany materiał siewny nie jest zanieczyszczony nasionami innych gatunków w ilości przekraczającej wartości podane w kolumnie 5.

(b) Nie określa się obecności nasion Cuscuta spp., jeżeli nie ma wątpliwości, że oceniany materiał jest wolny od nasion tych gatunków.

(c) Jeżeli w badanej próbie stwierdzono obecność jednego nasienia Cuscuta spp., to nie uważa się go za zanieczyszczenie, o ile w drugiej próbie o takiej samej masie nie stwierdzono obecności nasion Cuscuta spp.

(d) Jeżeli w badanej próbie o masie 100 gramów stwierdzono obecność jednego nasienia Orobanche spp., to nie uważa się go za zanieczyszczenie, o ile w drugiej próbce o masie 200 gramów nie stwierdzono obecności nasion Orobanche spp.

Choroby i szkodniki:

1) materiał siewny roślin oleistych i włóknistych powinien być praktycznie wolny od organizmów szkodliwych mających wpływ na jakość oraz wolny od szkodników magazynowych;

2) wymagania dotyczące porażenia materiału siewnego roślin oleistych i włóknistych organizmami szkodliwymi.

Tabela 11

Gatunek	Organizmy szkodliwe
	Maksymalny procent liczbowy nasion porażonych			Sclerotinia sclerotiorum (maksymalna liczba przetrwalników grzybów lub fragmentów tych przetrwalników w próbie o masie określonej w kolumnie 4 tabeli 8)
	Botrytis spp.	Alternaria linicola, Phoma exigua var. linicola, Colletotirchum linicola, Fusarium spp.	Platyedria gossypiella
1	2	3	4	5
Brassica napus L. (partim) Rzepak				10 (b)
Brassica rapa L. var. silvestris (Lam.) Briggs Rzepik				5 (b)
Cannabis sativa L. Konopie	5
Gossypium spp. Bawełna			1
Helianthus annuus L. Słonecznik	5			10 (b)
Linum usitatissimum L. Len zwyczajny	5	5 (a)
Sinnapis alba L. Gorczyca biała				5(b)
Glycine max (L.) Merrill Soja (c)

Objaśnienia:

(a) Dla nasion elitarnych lnu włóknistego maksymalna zawartość nasion porażonych przez Phoma exigua var. linicola nie może przekroczyć 1 % liczbowego.

(b) Nie określa się liczby przetrwalników lub ich fragmentów Sclerotinia sclerotiorum, jeżeli nie ma wątpliwości, że ich liczba nie przekroczyła wartości podanych w kolumnie 5.

- Pseudomonas syringae pv. glycinea była stwierdzona w nie więcej niż w 4 z 5 podpróbek utworzonych z podziału próby zawierającej co najmniej 5 000 nasion z jednej partii,

- występowanie nasion porażonych Diaporthe phaseolorum nie przekroczyło 15 % liczbowych,

- zawartość substancji obojętnej określonej przez międzynarodowe metody badawcze nie przekroczyła 0,3 % wagowego.

Wymagania jakościowe dla materiału siewnego kategorii handlowe

Wymagania jakościowe określone w tabelach 8, 10 i 11 mają zastosowanie do materiału siewnego roślin oleistych i włóknistych kategorii handlowe.

Wymagania jakościowe dla materiału siewnego buraka

1) dopuszczalna wielkość partii nasion buraków cukrowych i pastewnych wynosi 20 ton,

2) wielkość partii nie może przekraczać masy określonej w pkt 1 o więcej niż 5 %,

3) masa próby pobieranej do oceny laboratoryjnej wynosi nie mniej niż 500 gramów,

4) masa próby przeznaczonej do okresowej oceny w zakresie zdolności kiełkowania wynosi nie mniej niż 50 gramów,

5) próbę materiału siewnego przeznaczonego do badań pod kątem zawartości organizmów genetycznie zmodyfikowanych pobiera się zgodnie z międzynarodowo uznaną metodyką; wielkość próby powinna być nie mniejsza niż 3 000 sztuk nasion,

6) materiał siewny buraka powinien być praktycznie wolny od organizmów szkodliwych mających wpływ na jakość oraz wolny od szkodników magazynowych.

Tabela 12

Szczegółowe wymagania dla oceny laboratoryjnej nasion buraków

Gatunek	Kategoria i rodzaj materiału siewnego	Minimalna zdolność kiełkowania	Minimalna czystość analityczna	Maksymalna wilgotność
Gatunek	Kategoria i rodzaj materiału siewnego	% liczbowy¹⁾	% wagowy²⁾
Beta vulgaris	nasiona jednokiełkowe	80	97	15
Burak cukrowy	nasiona do siewu punktowego	75	97	15
	nasiona wielokiełkowe odmian, w których udział diploidów jest większy niż 85 %	73	97	15
	pozostałe nasiona	68	97	15
Beta vulgaris	nasiona jednokiełkowe	73	97	15
Burak pastewny	nasiona do siewu punktowego
	nasiona wielokiełkowe odmian, w których udział diploidów jest większy niż 85 %
	pozostałe nasiona	68	97	15

Objaśnienia:

¹⁾ Dotyczy kłębków inkrustowanych lub otoczkowanych oraz kłębków przed wykonaniem tego zabiegu.

²⁾ Nie dotyczy kłębków inkrustowanych lub otoczkowanych.

Wymagania dla nasion jednokiełkowych oraz nasion do siewu punktowego:

1) za nasiona jednokiełkowe uznaje się kłębki buraków, których:

a) nie mniej niż 90 % kiełkujących kłębków daje pojedyncze siewki,

b) nie więcej niż 5 % kiełkujących kłębków daje trzy siewki lub więcej;

2) za nasiona buraka cukrowego do siewu punktowego uznaje się kłębki, których:

a) nie mniej niż 70 % kiełkujących kłębków daje pojedyncze siewki,

b) nie więcej niż 5 % kiełkujących kłębków daje trzy lub więcej siewek;

3) za nasiona buraka pastewnego do siewu punktowego uznaje się kłębki, których:

a) w przypadku odmian, w których procent diploidów przekracza 85 %, nie mniej niż 58 % kiełkujących kłębków daje pojedyncze siewki,

b) nie mniej niż 63 % kiełkujących kłębków daje pojedyncze siewki,

c) nie więcej niż 5 % kiełkujących kłębków daje trzy siewki lub więcej.

Wymagania dla materiału siewnego buraków:

1) zawartość nasion innych gatunków w próbce nie może przekroczyć - 0,3 % wagowego;

2) ilość zanieczyszczeń w próbce nie może przekraczać:

a) dla nasion elitarnych - 1,0 % wagowego,

b) dla nasion kwalifikowanych - 0,5 % wagowego,

c) dla nasion przeznaczonych na obszary uznane jako wolne od rizomanii, dla obu kategorii - 0,5 % wagowego;

3) w przypadku nasion powlekanych, w szczególności inkrustowanych lub otoczkowanych, oznaczeń jakościowych dokonuje się na próbach pobieranych z nasion przygotowanych do procesu powlekania, to jest nasion obłuszczonych lub szlifowanych.

ZAŁĄCZNIK Nr 6

7 DOPUSZCZALNA WIELKOŚĆ PARTII W OBROCIE ORAZ SZCZEGÓŁOWE WYMAGANIA JAKOŚCIOWE DLA MATERIAŁU SIEWNEGO ROŚLIN WARZYWNYCH

Tabela 1

Wielkość partii nasion oraz masa próby do oceny laboratoryjnej

Gatunki		Wielkość partii¹⁾		Minimalna masa²⁾³⁾ próby
		w tonach		w gramach
1		2		3
Allium cepa L. - grupa Cepa Cebula, w tym echalion		10		25
Allium cepa L. - grupa Aggregatum Szalotka		10		25
Allium fistulosum L. Cebula siedmiolatka (czosnek dęty)		10		15
Allium sativum L. Czosnek pospolity		10		20
Allium schoenoprasum L. Szczypiorek		10		15
Allium porrum L. Por		10		20
Anthriscus cerefolium (L.) Hoffm. Trybuła ogrodowa		10		20
Apium graveolens L. Seler naciowy		10		5
Apium graveolens L. Seler korzeniowy		10		5
Asparagus officinalis L. Szparag		10		100
Beta vulgaris L. Burak liściowy i ćwikłowy		20		100
Brassica oleracea L. Kapustne, oprócz kapusty pekińskiej		10		25
Brassica rapa L. Kapusta pekińska		10		20
Brassica rapa L. Rzepa		10		20
Capsicum annuum L. Papryka		10		40
Cichorium intybus (partim) L. Cykoria liściowa		10		15
Cichorium intybus (partim) L. Cykoria korzeniowa	10		50
Cichorium endivia L. Endywia	10		15
Citrullus lanatus (Thunb.) Matsum. et Nakai Kawon (arbuz)	20		250
Cucumis melo L. Melon	20		100
Cucumis sativus L. Ogórek	10		25
Cucurbita maxima Duchesne Dynia olbrzymia	20		250
Cucurbita pepo L. Dynia zwyczajna	20		150
Cynara cardunculus L. Karczoch hiszpański (kard) i karczoch zwyczajny	10		50
Daucus carota L. Marchew	10		10
Foeniculum vulgare Mill. Koper włoski (fenkuł)	10		25
Lactuca sativa L. Sałata	10		10
Lycopersicon esculentum Mill. Pomidor	10		20
Petroselinum crispum (Mill.) Neman ex. A.W. Hill Pietruszka	10		10
Phaseolus coccineus L. Fasola wielokwiatowa	30		1000
Phaseolus vulgaris L. Fasola zwykła karłowa i tyczna	30		700
Pisum sativum L. (partim) Groch siewny (wyłącznie cukrowy i łuskowy)	30		500
Raphanus sativus L. Rzodkiew i rzodkiewka	10		50
Rheum rhabarbarum L. Rabarbar	10		135
Scorzonera hispanica L. Skorzonera (wężymord)	10		30
Solanum melongena L. Oberżyna	10		20
Spinacia oleracea L. Szpinak	10		75
Valerianella locusta (L.) Laterr. Roszponka warzywna	10		20
Vicia faba L. (partim) Bób	30		1000
Zea mays L. (partim) Kukurydza cukrowa	20		1000
Zea mays L. (partim) Kukurydza pękająca	20		1000

Objaśnienia:

¹⁾ Wielkość partii nie może zostać przekroczona więcej niż o 5 % masy określonej w kolumnie 2.

²⁾ W przypadku odmian mieszańcowych roślin warzywnych, minimalna masa próby może być zmniejszona do 1/4 podanej masy próby, jednakże próba powinna mieć masę nie mniejszą niż 5 g i zawierać co najmniej 400 nasion.

³⁾ Masa próby materiału siewnego przeznaczonego do okresowej oceny zdolności kiełkowania powinna stanowić co najmniej 1/4 podanej masy próby.

Tabela 2

Wymagania jakościowe dla nasion roślin warzywnych wszystkich kategorii

Gatunki	Minimalna czystość analityczna	Maksymalna zawartość nasion innych gatunków	Minimalna zdolność kiełkowania
Gatunki	% wagowy		% liczbowy
1	2	3	4
Allium cepa - grupa Cepa Cebula, w tym echalion	97	0,5	70
Allium cepa - grupa Aggregatum Szalotka	97	0,5	70
Allium porrum Por	97	0,5	65
Allium fistulosum Cebula siedmiolatka (czosnek dęty)	97	0,5	65
Allium sativum Czosnek pospolity	97	0,5	65
Allium schoenoprasum Szczypiorek	97	0,5	65
Anthriscus cerefolium Trybuła ogrodowa	96	1,0	70
Apium graveolens Seler	97	1,0	70
Asparagus officinalis Szparag	96	0,5	70
Beta vulgaris Burak liściowy	97	0,5	50 (do liczby kłębków)
Beta vulgaris Burak ćwikłowy	97	0,5	70 (do liczby kłębków)
Brassica oleracea spp. Warzywa kapustne, z wyjątkiem kalafiora i kapusty pekińskiej	97	1,0	75
Brassica oleracea convar. botrytis var. botrytis Kalafior	97	1,0	70
Brassica rapa Kapusta pekińska	97	1,0	75
Brassica rapa Rzepa	97	1,0	80
Capsicum annuum Papryka	97	0,5	65
Cichorium intybus (partim) Cykoria liściowa	95	1,5	65
Cichorium intybus (partim) Cykoria korzeniowa	97	1,0	80
Cichorium endivia Endywia	95	1,0	65
Citrullus lanatus Kawon (arbuz)	98	0,1	75
Cucumis melo Melon	98	0,1	75
Cucumis sativus Ogórek	98	0,1	80
Cucurbita maxima Dynia olbrzymia	98	0,1	80
Cucurbita pepo Dynia zwyczajna	98	0,1	75
Cynara cardunculus Karczoch hiszpański (kard) i karczoch zwyczajny	96	0,5	65
Daucus carota Marchew	95	1,0	65
Foeniculum vulgare Koper włoski (fenkuł)	96	1,0	70
Lactuca sativa Sałata	95	0,5	75
Lycopersicon esculentum Pomidor	97	0,5	75
Petroselinum crispum Pietruszka	97	1,0	65
Phaseolus coccineus Fasola wielokwiatowa	98	0,1	80
Phaseolus vulgaris Fasola zwykła	98	0,1	75
Pisum sativum Groch siewny (cukrowy i łuskowy)	98	0,1	80
Raphanus sativus Rzodkiew i rzodkiewka	97	1,0	70
Rheum rhabarbarum Rabarbar	97	0,5	70
Scorzonera hispanica Skorzonera (wężymord)	95	1,0	70
Solanum melongena Oberżyna	96	0,5	65
Spinacia oleracea Szpinak	97	1,0	75
Valerianella locusta Roszponka warzywna	95	1,0	65
Vicia faba Bób	98	0,1	80
Zea mays (partim) Kukurydza cukrowa	98	0,1	85
Zea mays (partim) Kukurydza pękająca ¹⁾	98	0,1	85

Objaśnienia

¹⁾W przypadku supersłodkich odmian kukurydzy cukrowej:

- wymagana minimalna zdolność kiełkowania wynosi 80 %,

- na etykietach urzędowych i etykietach prowadzącego obrót umieszcza się wyrazy: "minimalna zdolność kiełkowania - 80%".

Wymagania dotyczące chorób i szkodników:

1) materiał siewny roślin warzywnych powinien być praktycznie wolny od organizmów szkodliwych mających wpływ na jakość oraz wolny od wszelkich szkodników magazynowych;

2) materiał siewny roślin warzywnych powinien być wolny od żywych Acarina spp.;

3) materiał siewny roślin strączkowych powinien być wolny, w szczególności od następujących żywych organizmów:

a) Acanthoscelides obtectus Sag.,

b) Bruchus affinis Froel.,

c) Bruchus atomarius L.,

d) Bruchus pisorum L.,

e) Bruchus rufimanus Boh.

ZAŁĄCZNIK Nr 7

8 SZCZEGÓŁOWE WYMAGANIA DOTYCZĄCE WYTWARZANIA I JAKOŚCI MATERIAŁU ROZMNOŻENIOWEGO I NASADZENIOWEGO ROŚLIN WARZYWNYCH

1. Gatunki roślin warzywnych

Lp.	Nazwa polska	Nazwa łacińska
1	Bób	Vicia faba L. (partim)
2	Brokuł	Brassica oleracea L. convar. botrytis (L.) Alef. var. cymosa Duch.
3	Burak ćwikłowy	Beta vulgaris L. var. conditiva Alef.
4	Burak liściowy	Beta vulgaris L. var. vulgaris
5	Cebula	Allium cepa L.
6	Cykoria	Cichorium intybus L. (partim)
7	Czosnek pospolity	Allium sativum L.
8	Dynia olbrzymia	Cucurbita maxima Duch.
9	Dynia zwyczajna	Cucurbita pepo L.
10	Endywia	Cichorium endivia L.
11	Fasola wielokwiatowa	Phaseolus coccineus L.
12	Fasola zwykła	Phaseolus vulgaris L.
13	Groch siewny łuskowy i cukrowy	Pisum sativum L. (partim)
14	Jarmuż	Brassica oleracea L. convar. acephala (D.C.) Alef var. sabellica L.
15	Kalafior	Brassica oleracea L. convar. botrytis (L.) Alef. var. botrytis L.
16	Kalarepa	Brassica oleracea L. convar. acephala (D.C.) Alef var. gongylodes L.
17	Kapusta brukselska	Brassica oleracea L. convar. oleracea var. gemmifera D.C.
18	Kapusta głowiasta biała	Brassica oleracea L. convar. capitata (L.) Alef. var. alba D.C.
19	Kapusta głowiasta czerwona	Brassica oleracea L. convar. capitata (L.) Alef. var. rubra D.C.
20	Kapusta pekińska	Brassica rapa L.
21	Kapusta włoska	Brassica oleracea L. convar. capitata (L.) Alef. var. sabauda L.
22	Karczoch hiszpański (kard)	Cynara cardunculus L.
23	Karczoch zwyczajny	Cynara scolymus L.
24	Kawon (arbuz)	Citrullus lanatus (Thunb.) Matsum. et Nakai
25	Koper włoski (fenkuł)	Foeniculum vulgare Miller
26	Marchew	Daucus carota L.
27	Melon	Cucumis melo L.
28	Oberżyna	Solanum melongena L.
29	Ogórek	Cucumis sativus L.
30	Papryka	Capsicum annuum L.
31	Pietruszka	Petroselinum crispum (Miller) Nyman ex A.W. Hill
32	Pomidor	Lycopersicon esculentum Mill.
33	Por	Allium porrum L.
34	Rabarbar	Rheum spp.
35	Roszponka warzywna	Valerianella locusta (L.) Laterrade
36	Rzepa	Brassica rapa L.
37	Rzodkiew, rzodkiewka	Raphanus sativus L.
38	Sałata	Lactuca sativa L.
39	Seler	Apium graveolens L.
40	Cebula siedmiolatka (czosnek dęty)	Allium fistulosum L.
41	Skorzonera (wężymord)	Scorzonera hispanica L.
42	Szalotka	Allium ascalonicum L.
43	Szparag	Asparagus officinalis L.
44	Szpinak	Spinacia oleracea L.
45	Trybuła ogrodowa	Anthriscus cerefolium (L.) Hoffm.

2. Wymagania dotyczące wytwarzania materiału rozmnożeniowego i nasadzeniowego roślin warzywnych:

1) przed rozpoczęciem cyklu produkcji dostawca informuje właściwego wojewódzkiego inspektora o produkcji materiału rozmnożeniowego i nasadzeniowego roślin warzywnych;

2) pole, na którym jest zakładana plantacja, powinno być wolne od organizmów kwarantannowych;

3) przy zakładaniu plantacji należy stosować właściwy płodozmian, a w przypadku upraw pod osłonami - wymianę lub dezynfekcję podłoża;

4) plantacja powinna być wolna od innych gatunków roślin;

5) w przypadku plantacji gruntowych jest wymagana izolacja przestrzenna:

a) od roślin mogących stanowić źródło chorób i szkodników - nie mniejsza niż 100 m,

b) zabezpieczająca przed mechanicznym zamieszaniem - nie mniejsza niż 2 m;

6) podczas uprawy materiał powinien być utrzymywany w oddzielnych partiach stanowiących zbiór jednostek materiału rozmnożeniowego lub nasadzeniowego, który można zidentyfikować na podstawie ich jednorodnych cech;

7) partię, o której mowa w pkt 6, można tworzyć z materiału pochodzącego z różnych plantacji, jeżeli dostawca posiada dokumentację dotyczącą jej składu oraz pochodzenia poszczególnych składników;

8) materiał rozmnożeniowy i nasadzeniowy roślin warzywnych może być oferowany do sprzedaży i sprzedawany jako pojedyncze rośliny, w wiązkach, doniczkach, na paletach i multiplatach oraz w pojemnikach szklanych z produkcji in vitro.

3. Wymagania dotyczące jakości materiału rozmnożeniowego i nasadzeniowego roślin warzywnych:

1) materiał rozmnożeniowy i nasadzeniowy powinien:

a) być praktycznie wolny od wad mogących obniżyć jego jakość,

b) charakteryzować się odpowiednią żywotnością oraz mieć właściwe rozmiary i fazę rozwoju, w odniesieniu do jego przydatności jako materiału rozmnożeniowego i nasadzeniowego,

c) zachowywać odpowiednią proporcję między korzeniami, łodygami i liśćmi,

d) mieć odpowiednią tożsamość, czystość rodzajową, gatunkową lub odmianową, za które odpowiada dostawca;

2) organizmy szkodliwe mające wpływ na jakość materiału rozmnożeniowego i nasadzeniowego roślin warzywnych, od których materiał rozmnożeniowy i nasadzeniowy powinien być praktycznie wolny:

Gatunek	Organizmy szkodliwe (nazwa łacińska lub angielska)
Cebula szalotka	Szkodniki we wszystkich stadiach rozwoju:
- Allium ascalonicum	Delia spp.
	Thysanoptera (Thrips tabaci)
	Choroby grzybowe:
	Botrytis spp.
	Peronospora destructor
	Sclerotium cepivorum
	Wirusy i organizmy wirusopodobne
	Onion yellow dwarf virus
Cebula	Szkodniki we wszystkich stadiach rozwoju:
- Allium cepa	Delia spp.
	Thysanoptera (Thrips tabaci)
	Choroby bakteryjne
	Pseudomonas spp.
	Choroby grzybowe:
	Botrytis spp.
	Fusarium oxysporum f. sp. cepae
	Peronospora destructor
	Sclerotium cepivorum
	Wirusy i organizmy wirusopodobne
	Onion yellow dwarf virus
Cebula siedmiolatka	Szkodniki we wszystkich stadiach rozwoju:
- Allium fistulosum	Delia spp.
	Thysanoptera (Thrips tabaci)
	Choroby grzybowe
	Sclerotium cepivorum
	Wszystkie wirusy i organizmy wirusopodobne
Por	Szkodniki we wszystkich stadiach rozwoju:
- Allium porrum	Delia spp.
	Thysanoptera
	Choroby bakteryjne
	Pseudomonas spp.
	Choroby grzybowe:
	Alternaria porri
	Fusarium culmorum
	Phytophthora porri
	Sclerotinium cepivorum
	Wszystkie wirusy i organizmy wirusopodobne, szczególnie
	Leek yellow stripe virus
Czosnek		Szkodniki we wszystkich stadiach rozwoju:
- Allium sativum		Aceria tulipae
		Delia spp.
		Thysanoptera
		Choroby bakteryjne
		Pseudomonas fluorescens
		Choroby grzybowe
		Sclerotinium cepivorum
		Wszystkie wirusy i organizmy wirusopodobne, szczególnie
		Onion yellow dwarf virus
Seler		Szkodniki we wszystkich stadiach rozwoju:
- Apium graveolens		Acidia heraclei
		Lygus spp.
		Psila rosae
		Thysanoptera (Frankliniella occidentalis i Thrips tabaci)
		Choroby bakteryjne:
		Erwinia carotovora subsp. carotovora
		Pseudomonas syringae pv. apii
		Choroby grzybowe:
		Fusarium oxysporum f. sp. apii
		Foma apiicola
		Pythium spp.
		Sclerotinia sclerotiorum
		Septoria apiicola
		Wszystkie wirusy i organizmy wirusopodobne, szczególnie:
		Celery mosaic virus
		Cucumber mosaic virus
Szparag		Szkodniki we wszystkich stadiach rozwoju:
- Asparagus		Brachycorynella asparagi
officinalis		Hypopta caestrum
		Platyparea poecyloptera
		Choroby grzybowe:
		Fusarium spp.
		Rhizoctonia violacea
		Wszystkie wirusy i organizmy wirusopodobne
		Ogólnie
Burak ćwikłowy i		Szkodniki we wszystkich stadiach rozwoju
liściowy		Pegomyia betae
- Beta vulgaris		Choroby grzybowe
		Phoma betae
		Wszystkie wirusy i organizmy wirusopodobne, szczególnie
		Beet necrotic yellow vein virus
Warzywa kapustne		Szkodniki we wszystkich stadiach rozwoju:
- Brassica oleracea		Aleyrodidae
spp.		Aphididae
		Heterodera spp.
		Lepidoptera (Pieris brassicae)
		Thysanoptera (Frankliniella occidentalis)
		Choroby bakteryjne:
		Pseudomonas syringae pv. maculicola
		Xanthomonas campestris pv. campestris
		Choroby grzybowe:
		Alternaria brassicae
		Mycospharella spp.
		Phoma lingam
		Plasmodiophora brassicae
		Pythium spp.
		Rhizoctonia solani
		Wszystkie wirusy i organizmy wirusopodobne, szczególnie:
		Cauliflower mosaic virus, Tospoviruses
		Turnip mosaic virus
Kapusta pekińska		Szkodniki wszystkich stadiów rozwoju:
- Brassica rapa L.		Aphididae
		Lepidoptera (Pieris brassicae)
		Choroby bakteryjne:
		Erwinia carotovora
		Xanthomonas campestris pv. campestris
		Choroby grzybowe:
		Alternaria brassicae
		Botrytis cinerea
		Mycospharella spp.
		Phoma lingam
		Plasmodiophora brassicae
		Sclerotinia spp.
		Wszystkie wirusy i organizmy wirusopodobne, szczególnie
		Tospoviruses
Papryka		Szkodniki we wszystkich stadiach rozwoju:
- Capsicum annuum		Aleyrodidae
		Leptinotarsa decemlineata
		Ostrinia nubilalis
		Phthorimaea operculella
		Tetranychidae
		Thysanoptera (Frankliniella occidentalis)
		Choroby grzybowe:
		Leveillula taurica
		Pyrenochaeta lycopersici
		Pythium spp.
		Phytophthora capsici
		Verticillium albo-atrum
		Verticillium dahliae
		Wszystkie wirusy i organizmy wirusopodobne, szczególnie:
		Cucumber mosaic virus
		Tomato mosaic virus
		Pepper mild mottle virus
		Tobacco mosaic virus
Endywia		Szkodniki we wszystkich stadiach rozwoju:
- Cichorium endivia		Aphididae
		Thysanoptera (Frankliniella occidentalis)
		Choroby grzybowe:
		Botrytis cinerea
		Erysiphe cichoriacearum
		Sclerotinia spp.
		Wszystkie wirusy i organizmy wirusopodobne, szczególnie:
		Beet western yellow virus
		Lettuce mosaic virus
Cykoria		Szkodniki we wszystkich stadiach rozwoju:
- Cichorium intybus		Aphididae
		Napomyza cichorii
		Apion assimile
		Choroby bakteryjne:
		Erwinia spp.
		Pseudomonas marginalis
		Choroby grzybowe:
		Phoma exigua var. exigua
		Phytophthora erythroseptica
		Pythium spp.
		Sclerotinia sclerotiorum
Kawon (arbuz)		Szkodniki we wszystkich stadiach rozwoju:
- Citrullus lanatus		Aleyrodidae
		Aphididae
		Meloidogyne spp.
		Polyphagotarsonenmus latus
		Tetranychus spp.
		Thysanoptera (Frankliniella occidentalis)
		Choroby grzybowe
		Colletotrichum lagenarium
		Wszystkie wirusy i organizmy wirusopodobne, szczególnie
		Watermelon mosaic virus 2
Melon		Szkodniki we wszystkich stadiach rozwoju:
- Cucumis melo		Aleyrodidae
		Aphididae
		Meloidogyne spp.
		Polyphagotarsonemus latus
		Tetranychus spp.
		Thysanoptera (Frankliniella occidentalis)
		Choroby bakteryjne
		Pseudomonas syringae pv. lachrymans
		Choroby grzybowe:
		Colletotrichum lagenarium
		Fusarium spp.
		Pythium spp.
		Sphaerotheca fuliginea
		Verticillium spp.
		Wszystkie wirusy i organizmy wirusopodobne, szczególnie:
		Cucumber green mottle virus
		Cucumber mosaic virus
		Squash mosaic virus
Ogórek		Szkodniki we wszystkich stadiach rozwoju:
- Cucumis sativus		Aleyrodidae
		Aphididae
		Delia platura
		Meloidogyne spp.
		Polyphagotarsonemus latus
		Tetranychus spp.
		Thysanoptera (Frankliniella occidentalis)
		Choroby bakteryjne
		Pseudomonas syringae pv. lachrymans
		Choroby grzybowe:
		Fusarium spp.
		Phytophthora spp.
		Pseudoperonospora cubensis
		Pythium spp.
		Rhizoctonia spp.
		Sphaerotheca fuliginea
		Verticillium spp.
		Wszystkie wirusy i organizmy wirusopodobne
Dynia olbrzymia		Szkodniki we wszystkich stadiach rozwoju:
- Cucurbita maxima		Aleyrodidae
Duch.		Aphididae
		Meloidogyne spp.
		Polyphagotarsonemus latus
		Tetranychus spp.
		Thysanoptera (Frankliniella occidentalis)
		Wszystkie wirusy i organizmy wirusopodobne
Dynia zwyczajna		Szkodniki we wszystkich stadiach rozwoju:
- Cucurbita pepo		Aleyrodidae
		Aphididae
		Meloidogyne spp.
		Polyphagotarsonemus latus
		Teranychus spp.
		Thysanoptera (Frankliniella occidentalis)
		Choroby bakteryjne
		Pseudomonas syringae pv. lachrymans
		Choroby grzybowe:
		Fusarium spp.
		Sphaerotheca fuliginea
		Verticillium spp.
		Wszystkie wirusy i organizmy wirusopodobne, szczególnie:
		Cucumber mosaic virus
		Squash mosaic virus
		Zucchini yellow mosaic virus
		Tospoviruses
Karczoch zwyczajny i		Szkodniki we wszystkich stadiach rozwoju:
karczoch hiszpański		Aleyrodidae
(kard)		Aphididae
- Cynara scolymus i		Thysanoptera
Cynara cardunculus		Choroby grzybowe:
		Bremia lactucae
		Leveillula taurica f. sp. cynara
		Pythium spp.
		Rhizoctonia solani
		Sclerotium rolfsii
		Sclerotinia sclerotiorum
		Verticillium dahliae
		Wszystkie wirusy i organizmy wirusopodobne
Fenkuł	Szkodniki we wszystkich stadiach rozwoju:
- Foeniculum vulgare	Aleyrodidae
	Aphididae
	Thysanoptera
	Choroby bakteryjne:
	Erwinia carotovora subsp. carotovora
	Pseudomonas marginalis pv. marginlis
	Choroby grzybowe:
	Cercospora foeniculi
	Phytophthora syringae
	Sclerotinia spp.
	Wszystkie wirusy i organizmy wirusopodobne
	Celery mosaic virus
Sałata	Szkodniki we wszystkich stadiach rozwoju:
- Lactuca sativa	Aphididae
	Meloidogyne spp.
	Thysanoptera, szczególnie Frankliniella occidentalis
	Choroby grzybowe:
	Botrytis cinerea
	Bremia lactucae
	Pythium spp.
	Wszystkie wirusy i organizmy wirusopodobne, szczególnie:
	Lettuce big vein
	Lettuce mosaic virus
	Lettuce ring necrosis
Pomidor	Szkodniki we wszystkich stadiach rozwoju:
- Lycopersicon	Aphididae
esculentum Mill.	Aleyrodidae
	Hauptidia maroccana
	Meloidogyne spp.
	Tetranychus spp.
	Thysanoptera, szczególnie Frankliniella occidentalis
	Vasates lycopersici
	Choroby bakteryjne
	Pseudomonas syringae pv. tomato
	Choroby grzybowe:
	Alternaria solani
	Cladosporium fulvum
	Colletotrichum coccodes
	Didymella lycopersici
	Fusarium oxysporum
	Leveillula taurica
		Phytophthora nicotinae
		Pyrenochaeta lycopersici
		Pythium spp.
		Rhizoctonia solani
		Sclerotinia sclerotiorum
		Verticillium spp.
		Wszystkie wirusy i organizmy wirusopodobne:
		Cucumber mosaic virus
		Potato virus X
		Potato virus Y
		Tobacco mosaic virus
		Tomato mosaic virus
		Tomato yellow leaf curl virus
Rabarbar		Choroby bakteryjne:
- Rheum spp.		Agrobacterium tumefaciens
		Erwinia rhapontici
		Choroby grzybowe:
		Armillariella mellea
		Verticillium spp.
		Wszystkie wirusy i organizmy wirusopodobne, szczególnie:
		Arabic mosaic virus
		Turnip mosaic virus
Oberżyna		Szkodniki we wszystkich stadiach rozwoju:
- Solanum melongena		Aleyrodidae
		Aphididae
		Hemitarsonemus latus
		Leptinotarsa decemlineata
		Meloidogyne spp.
		Tetranychidae
		Thysanoptera, szczególnie Frankliniella occidentalis
		Choroby grzybowe:
		Fusarium spp.
		Leveillula tauricia f. sp. cynara
		Rhizoctonia solani
		Pythium spp.
		Sclerotinia sclerotiorum
		Verticillium spp.
		Wszystkie wirusy i organizmy wirusopodobne, szczególnie:
		Cucumber mosaic virus
		Eggplant mosaic virus
		Potato virus Y
		Tobacco mosaic virus

4. Wymagania dodatkowe dotyczące wytwarzania i jakości materiału siewnego cebuli dymki i czosnku:

1) cebuli dymki i czosnku nie wytwarza się na polu, na którym w okresie ostatnich czterech lat były uprawiane rośliny cebulowe;

2) odległość plantacji dymki i czosnku od innych upraw gatunków cebulowych powinna być nie mniejsza niż 50 m; odległość ta może być zmniejszona do nie mniej niż 2 m, w przypadku gdy sąsiadująca plantacja jest odpowiednio plantacją cebuli dymki lub plantacją czosnku, spełniającą wymagania dotyczące wytwarzania;

3) na powierzchni 10 m² nie może występować więcej niż 0,5 rośliny innych odmian;

4) ocena cech zewnętrznych partii cebulek dymki i czosnku wytworzonych na terytorium Rzeczypospolitej Polskiej:

Lp.	Wyszczególnienie	Nie więcej niż (% wagowy)
	I. Czosnek
1	Cebulki nietypowe dla odmiany	1,0
2	Cebulki o masie mniejszej niż 30 g i średnicy mniejszej niż 3 cm oraz ząbki o masie mniejszej niż 6 g dla odmian zimowych	3,0
3	Cebulki o masie mniejszej niż 20 g i średnicy mniejszej niż 2 cm oraz ząbki o masie mniejszej niż 4 g dla odmian letnich	5,0
4	Cebulki zniekształcone, chore, z uszkodzeniami mechanicznymi lub o silnie spękanej łusce	1,0
	II. Cebula dymka
1	Cebulki porażone Penicillium i innymi chorobami jakościowymi	1,0
2	Cebulki z objawami występowania Sclerotium cepivorum	0,0
3	Cebulki nietypowe dla odmiany	1,0
4	Cebulki uszkodzone	0,5
5	Cebulki pozbawione łuski	2,0
6	Cebulki skiełkowane	3,0
7	Cebulki z zaschniętym szczypiorem dłuższym niż 2 cm	3,0
8	Cebulki z zaschniętymi korzeniami dłuższymi niż 4 cm	3,0
9	Cebulki o niewłaściwej wielkości	3,0
10	Ziemia i inne zanieczyszczenia	0,5
Łącznie wady wymienione w lp. 1-9		5,0

5) sortowanie cebuli dymki:

a) wytworzona na terytorium Rzeczypospolitej Polskiej partia cebuli dymki przed wprowadzeniem do obrotu powinna być posortowana na frakcje o wielkości:

Frakcja	Średnica cebulek (w mm)
I	5-10
II	powyżej 10-15
III	powyżej 15-20
IV	powyżej 20-25

b) w jednym opakowaniu może znajdować się tylko jedna frakcja,

c) na opakowaniu umieszcza się informację dotyczącą wielkości cebulek, z podaniem numeru frakcji oraz średnicy cebulek.

Sprawdzenia wymagań dotyczących wytwarzania i jakości materiału rozmnożeniowego i nasadzeniowego roślin warzywnych dokonuje wojewódzki inspektor ochrony roślin i nasiennictwa podczas kontroli co najmniej raz w danym cyklu produkcji, nie rzadziej niż raz w roku.

ZAŁĄCZNIK Nr 8

SZCZEGÓŁOWE WYMAGANIA DOTYCZĄCE WYTWARZANIA I JAKOŚCI MATERIAŁU ROZMNOŻENIOWEGO I NASADZENIOWEGO ROŚLIN OZDOBNYCH

1. Produkcja materiału rozmnożeniowego lub nasadzeniowego roślin ozdobnych może być założona na glebie lub podłożu wolnym od organizmów szkodliwych, w tym kwarantannowych.

2. Rośliny przeznaczone do produkcji materiału rozmnożeniowego i nasadzeniowego roślin ozdobnych w sposób wegetatywny powinny przejść przynajmniej jeden pełny cykl rozwoju.

3. W cyklu, o którym mowa w ust. 2, dokonuje się oceny czystości odmianowej wytwarzanego materiału:

1) dla roślin ozdobnych z liści jest to stadium pełnej wartości dekoracyjnej;

2) dla roślin ozdobnych z kwiatów - w fazie kwitnienia nie mniej niż 10 % roślin, a w przypadku frezji nie mniej niż 50 %.

4. Przy zakładaniu plantacji konieczne jest zachowanie właściwego płodozmianu, a w przypadku roślin uprawianych pod osłonami wymagana jest wymiana podłoża lub jego dezynfekcja.

5. Plantacja materiału rozmnożeniowego lub nasadzeniowego roślin ozdobnych powinna być wolna od innych gatunków roślin niż uprawiany, a ponadto:

1) niedopuszczalne jest występowanie innych odmian tego samego gatunku;

2) nie może być więcej niż 2 % roślin nietypowych dla odmiany pod względem barwy kwiatów, typu i budowy kwiatostanu oraz pokroju roślin.

6. Materiał rozmnożeniowy lub nasadzeniowy, który stanowią cebule, bulwocebule lub bulwy, powinien pochodzić z materiałów poddanych ocenie i uznanych jako spełniające wymagania dotyczące jakości i zdrowotności.

7. Materiał rozmnożeniowy lub nasadzeniowy Citrus spp. powinien:

1) pochodzić z materiałów poddanych ocenie i uznanych za spełniające wymagania w szczególności dotyczące zdrowotności w zakresie chorób wirusowych i wirusopodobnych;

2) być szczepiony na podkładkach odpornych na choroby wirusowe.

8. Materiał rozmnożeniowy i nasadzeniowy roślin ozdobnych powinien być praktycznie wolny od:

1) szkodników, chorób grzybowych, bakteryjnych oraz wirusowych i wirusopodobnych;

2) objawów występowania tych organizmów;

3) wad obniżających jego jakość.

9. Materiał rozmnożeniowy i nasadzeniowy roślin ozdobnych powinien:

1) charakteryzować się odpowiednią żywotnością;

2) mieć właściwe rozmiary;

3) mieć odpowiednią fazę rozwoju w odniesieniu do jego przydatności jako materiału rozmnożeniowego i nasadzeniowego;

4) zachowywać odpowiednie proporcje między korzeniami, łodygami i liśćmi.

10. Jeżeli materiałem rozmnożeniowym są nasiona, powinny one wykazywać odpowiednią dla gatunku zdolność kiełkowania.

11. Sprawdzenia wymagań dotyczących wytwarzania i jakości materiału rozmnożeniowego i nasadzeniowego roślin ozdobnych dokonuje wojewódzki inspektor ochrony roślin i nasiennictwa podczas kontroli, którą przeprowadza co najmniej raz w danym cyklu produkcji i nie rzadziej niż raz w roku oraz która obejmuje w szczególności sprawdzenie:

1) warunków fitosanitarnych wytwarzanego materiału roślinnego;

2) dokumentacji dotyczącej tego materiału;

3) przestrzegania założonych istotnych parametrów wytwarzania materiału rozmnożeniowego i nasadzeniowego poszczególnych gatunków.

Wykaz organizmów szkodliwych na gatunkach roślin ozdobnych, których materiał rozmnożeniowy i nasadzeniowy podlega ocenie cech zewnętrznych

Gatunek	Organizmy szkodliwe (nazwa łacińska lub angielska)
Begonia wyniosła	szkodniki we wszystkich stadiach rozwoju:
Begonia x hiemalis Fotsch	Bemisia tabaci
	Liriomyza spp.
	Aleyrodideae
	Aphelenchoides spp.
	Aphidodea
	Ditylenchus destructor
	Meloidogyne spp.
	Myzus ornatus
	Otiorhynchus sulcatus
	Sciaridae
	Thysanoptera
	Frankliniella occidentalis
	choroby grzybowe:
	Botrytis spp.
	Fusarium sacchari
	Microsphaera begoniae
	Phytophthora spp.
	Pythium spp.
	Rhizoctonia spp.
	choroby bakteryjne:
	Corynobacterium fascians
	Rhodococcus fascians
	Erwinia chrysanthemi
	Xanthomonas campestris pv. begoniae
	wirusy i organizmy wirusopodobne:
	Impatiens necrotic spot tospovirus INSV
	Tomato spotted wilt tospovirus TSWV
Chryzantema wielkokwiatowa	szkodniki we wszystkich stadiach rozwoju:
Dendranthema (DC.) Des	Liriomyza spp.
Moul	Heliothis armigera
	Spodoptera littoralis
	Bemisia tabaci
	Agromyzidae
	Frankliniella occidentalis
	Aphelenchoides spp.
	Aleyrodidae
	Diarthronomyia chrysanthemi
	Lepidoptera spp.
	Spodoptera exiqua
	Thysanoptera
	choroby grzybowe:
	Didymella ligulicola
	Puccinia horiana
	Botrytis cinerea
	Fusarium oxysporum f. sp. chrysanthemi
	Phytophthora cryptogea
	Puccinia chrysanthemi
	Pythium spp.
	Rhizoctonia solani
	Sclerotinia sclerotiorum
	Verticillium alboatrum
	choroby bakteryjne:
	Agrobacterium tumefaciens
	Erwinia chrysanthemi
	Pseudomonas cichorii
	wirusy i organizmy wirusopodobne:
	Chrysanthemum stunt viroid CSVd
	Impatiens necrotic spot tospovirus INSV
	Tomato spotted wilt tospovirus TSWV
	Chrysanthemum B carlavirus CBV
	Tomato aspermy cucumovirus TAV
Cytrus - gatunki	szkodniki we wszystkich stadiach rozwoju:
Citrus spp.	Aleurothrixusfloccosus (Maschell)
	Meloidogyne spp.
	Parabemisia myricae
	Tylenchulus semipenetrans
	choroby grzybowe
	Phytophthora spp.
	wirusy i organizmy wirusopodobne
	choroby wirusowe ogółem
Daktylowiec	szkodniki we wszystkich stadiach rozwoju
Phoenix L.	Thysanoptera
	choroby grzybowe:
	Exosporium palmivorum
	Gliocladium wermoeseni
	Graphiola phoenicis
	Pestalozzia phoenicis
	Pythium spp.
	wirusy i organizmy wirusopodobne
	choroby wirusowe ogółem
Gerbera	szkodniki we wszystkich stadiach rozwoju:
Gerbera jamesonii H. Bol.	Liriomyza spp.
	Agromyzidae
	Aleurodidae (Bemisia tabaci)
	Lepidoptera
	Sciaridae
	Spodoptera exiqua
	Thysanoptera
	Aphelenhoides spp.
	Meloidogyne spp.
	choroby grzybowe:
	Fusarium oxysporum f. sp. gerberae
	Myrothecium roridum
	Oidium spp.
	Phytophthora cryptogea
	Rhizoctonia solani
	Thanatephorus cucumeris
	Verticillium spp.
	choroby bakteryjne
	Pseudomonas cichorii
	wirusy i organizmy wirusopodobne:
	Impatiens necrotic spot tospovirus INSV
	Tomato spotted wilt tospovirus TSWV
Goździk	szkodniki we wszystkich stadiach rozwoju:
Dianthus caryophyllus L. i	Liriomyza spp.
mieszańce	Heliothis armigera
	Spodoptera littoralis
	Agromyzidae
	Aleyrodidae (Bemisia tabaci)
	Aphidodea
	Frankliniella occidentalis
	Lepidoptera
	Tetranychidae
	Thysanoptera
	choroby grzybowe:
	Alternaria dianthi + Alternaria dianthicola
	Fusarium oxysporum f. sp. dianthi
	Fusarium spp.
	Pythium spp.
	Mycosphaerella dianthi
	Phytophthora nicotianae var. nicotianae
	Thanatephorus cucumeris
	Rhizoctonia solani
	Uromyces dianthi
	choroby bakteryjne:
	Erwinia chrysanthemi pv. dianthicola
	Phialophora cinerescens
	Pseudomonas caryophylli
	wirusy i organizmy wirusopodobne:
	Carnation mottle carmovirus CarMV
	Carnation vein mottle potyvirus CVMV
	Carnation etched ring caulimovirus CERV
	Carnation necrotic fleck closterovirus CNFV
	Impatiens necrotic spot tospovirus INSV
	Tomato spotted wilt tospovirus TSWV
Porażenie wszystkimi patogenami łącznie nie więcej niż 10 %
Grusza	szkodniki we wszystkich stadiach rozwoju:
Pyrus L.	Anarsia lineatella
	Eriosoma lanigerum
	Scale insects, in particular
	Epidiaspis leperii, Pseudaulacaspis pentagona
	Quadraspidiotus perniciosus
	choroby grzybowe:
	Armillariella mellea
	Chondrostereum purpureum
	Nectria galligena
	Phytophthora spp.
	Rosellinia necatrix
	Verticillium spp.
	choroby bakteryjne:
	Agrobacterium tumefaciens
	Pseudomonas syringae pv. syringae
	wirusy i organizmy wirusopodobne
	choroby wirusowe ogółem
Jabłoń	szkodniki we wszystkich stadiach rozwoju:
Malus Miller	Anarsia lipieatella
	Eriosoma lanigerum
	Scale insect, in particular
	Epidiaspis leperii, Pseudaulacaspis pentagona
	Quadraspidiotus perniciosus
	choroby grzybowe:
	Armillariella mellea
	Chondrostereum purpureum
	Nectria galligena
	Phytophthora cactorum
	Rosellinia necatrix
	Venturia spp.
	Verticillium spp.
	choroby bakteryjne:
	Agrobacterium tumefaciens
	Pseudomonas syringae pv. syringae
	wirusy i organizmy wirusopodobne
	choroby wirusowe ogółem
Lilia	szkodniki we wszystkich stadiach rozwoju:
Lilium L.	Aphelenchoides spp.
	Liothrips vaneeckei
	Pratylenchus penetrans
	Rhizoglyphus spp.
	Rotylenchus robustus
	choroby grzybowe:
	Cylindrocarpon destructans
	Fusarium oxysporum f. sp. lilii
	Pythium spp.
	Rhizoctonia spp.
	Rhizopus spp.
	Sclerotium rolfsii
	choroby bakteryjne:
	Erwinia carotovora subsp. carotovora
	Rhodococcus fascians
	wirusy i organizmy wirusopodobne:
	Cucumber mosaic cucumovirus CMV
	Lily motlle potyvirus LMoV
	Lily X potexvirus LXV
	Lily symptomless carlavirus LSV
	Tobacco rattle tobravirus TRV
Mieczyk ogrodowy	szkodniki we wszystkich stadiach rozwoju:
Gladiolus L.	Ditylenchus dipsaci
	Thysanoptera
	choroby grzybowe:
	Botrytis gladiolorum
	Curvularia trifolii
	Fusarium oxysporum f. sp. gladioli
	Penicillium gladioli
	Sclerotinia spp.
	Septoria gladioli
	Urocystis gladiolicola
	Uromyces transversalis
	choroby bakteryjne:
	Pseudomonas marginata
	Rhodococcus fascians
	wirusy i organizmy wirusopodobne:
	Aster yellows phytoplasma AY
	Cucumber mosaic cucumovirus CMV
	Narcissus latent macluravirus NLV
	Tobacco rattle tobravirus TRV Bean yellow mosaic potyvirus BYMV
Narcyz	szkodniki we wszystkich stadiach rozwoju:
Narcissus L.	Ditylenchus dipsaci
	Merodon equestris
	Eumerus spp.
	Steneotarsonemus laticeps
	choroby grzybowe:
	Fusarium oxysporum f. sp. narcissi
	Penicillium spp.
	Botrytis narcissicola
	wirusy i organizmy wirusopodobne:
	Cucumber mosaic cucumovirus CMV
	Narcissus latent macluravirus NLV
	Narcissus late season yellows potyvirus NLSYV
	Narcissus yellow stripe potyvirus NYSV
	Narcissus mosaic potexvirus NMV
	Narcissus tip necrosis carmovirus NTNV
	Tobacco rattle tobravirus TRV
Pelargonia	szkodniki we wszystkich stadiach rozwoju:
Pelargonium L'Herit. ex	Bemisia tabaci
Ait.	Aleyrodidae
	Lepidoptera
	Thysanoptera
	Frankliniella occidentalis
	choroby grzybowe:
	Puccinia pelargonii-zonalis
	Botrytis spp.
	Pythium spp.
	Verticillium spp.
	choroby bakteryjne:
	Rhodococcus fascians
	Xanthomonas campestris pv. pelargonii
	wirusy i organizmy wirusopodobne:
	Tomato ringspot nepovirus ToRSV
	Pelargonium flower break carmovirus PFBV
	Pelargonium leaf curl tombusvirus PLCV
	Pelargonium line pattern disease PLPD
	Impatiens necrotic spot tospovirus NSV
	Tomato spotted wilt tospovirus TSWV
Róża	szkodniki we wszystkich stadiach rozwoju:
Rosa L.	Meloidogyne spp.
	Cacoecimorpha pronubana
	Epichoristodes acerbella
	Pratylenchus penetrans
	Pratylenchus vulnus
	Xiphinema spp.
	choroby grzybowe:
	Cylindrocladium scoparium
	Coniothyrium spp.
	Diplocarpon rosae
	Peronospora sparsa
	Phragmidium spp.
	Phytophthora megasperma
	Sphaerotheca pannosa
	Verticillium spp.
	choroby bakteryjne
	Agrobacterium tumefaciens
	wirusy i organizmy wirusopodobne:
	Tomato ringspot nepovirus ToRSV
	Apple mosaic ilarvirus ApMV
	Arabic mosaic nepovirus ArMV
	Prunus necrotic ringspot ilarvirus PNRSV
Sosna czarna	szkodniki we wszystkich stadiach rozwoju:
Pinus nigra L.	Blastophaga spp.
	Rhyacionia buoliana
	choroby grzybowe
	Lophodermium seditiosum
	wirusy i organizmy wirusopodobne
	choroby wirusowe ogółem
Śliwa	szkodniki we wszystkich stadiach rozwoju:
Prunus L.	Capnodis tenebrionis
	Meloidogyne spp.
	Scale insects, in particular
	Epidiaspis leperii, Pseudoulacaspis pentagona
	Quadraspidiotus perniciosus
	choroby grzybowe:
	Armillariella mellea
	Chondrostereum purpureum
	Nectria galligena
	Rosellinia necatrix
	Taphrina deformans
	Verticillium spp.
	choroby bakteryjne:
	Agrobacterium tumefaciens
	Pseudomonas syringae pv. mors prunorum
	Pseudomonas syringae pv. syringae
	wirusy i organizmy wirusopodobne
	choroby wirusowe ogółem
Wilczomlecz - gatunki	szkodniki we wszystkich stadiach rozwoju:
Euphorbia spp.	Bemisia tabaci
	Aleyrodidae
	Aphidodea
	Nematodes
	Thysanoptera
	Tetranychidae
	choroby grzybowe:
	Fusarium spp.
	Phytophthora spp.
	Pythium ultimum
	Rhizoctonia solani
	Thielaviopsis basicola
	wirusy i organizmy wirusopodobne:
	Impatiens necrotic spot virus INSV
	Tomato spotted wilt tospovirus TSWV

ZAŁĄCZNIK Nr 9

9 SZCZEGÓŁOWE WYMAGANIA DOTYCZĄCE WYTWARZANIA I JAKOŚCI MATERIAŁU SZKÓŁKARSKIEGO ROŚLIN SADOWNICZYCH I WINOROŚLI

A. Wytwarzanie elitarnego i kwalifikowanego materiału szkółkarskiego roślin sadowniczych

I. Wymagania ogólne

1. Za elitarny materiał szkółkarski uważa się materiał, do którego wytwarzania użyto składników elitarnych.

2. Za kwalifikowany materiał szkółkarski uznaje się materiał, do którego wytwarzania użyto składników kwalifikowanych lub elitarnych.

3. Za materiał szkółkarski wolny od wirusów uznaje się materiał, do którego wytwarzania użyto składników wolnych od wirusów.

4. Plantacje szkółkarskie zakłada się na gruntach lub podłożach uznanych za wolne od organizmów kwarantannowych.

5. Plantacje szkółkarskie materiału elitarnego i kwalifikowanego z rodzaju Prunus, Rubus i Fragaria zakłada się na gruntach lub w podłożach uznanych za wolne od nicieni z rodzaju Longidorus spp. i Xiphinema spp. będących wektorami wirusów.

II. Wymagania dla materiału przedbazowego

Rośliny przedbazowe powinny pochodzić z tożsamych odmianowo roślin kandydackich. Rośliny powinny rosnąć w pojemnikach bez kontaktu korzeni z glebą lub w odkażonym podłożu w osiatkowanych pomieszczeniach (karkasach). Rośliny powinny być przetestowane w celu stwierdzenia, czy są wolne od organizmów wymienionych w tym załączniku. Testowanie okresowo powtarza się w celu sprawdzenia zdrowotności roślin. Do testowania stosuje się metodyki testów rekomendowane przez Europejską Śródziemnomorską Organizację Ochrony Roślin (EPPO) albo inne rekomendowane metodyki w przypadku braku metodyk rekomendowanych przez EPPO. Sprawdzenie zdrowotności dla materiału przedbazowego wytworzonego na terytorium Rzeczypospolitej Polskiej powinno być przeprowadzone w Instytucie Sadownictwa i Kwiaciarstwa w Ośrodku Elitarnego Materiału Szkółkarskiego w Prusach.

III. Plantacje podkładek wegetatywnych drzew owocowych

1. Izolacja przestrzenna:

1) mateczniki podkładek roślin, które są porażane przez wirus ospowatości śliwy (Plum pox virus), powinny być położone w odległości nie mniejszej niż 250 m od dziko rosnących lub roślin uprawnych tych roślin;

2) mateczniki podkładek roślin, które nie są porażane przez wirus ospowatości śliwy, powinny być położone w odległości nie mniejszej niż 10 m od dziko rosnących lub roślin uprawnych tych roślin;

3) mateczniki wolne od wirusów powinny być położone w odległości nie mniejszej niż 3 m od innych mateczników;

4) podkładki różnych odmian powinny być wysadzone w oddzielnych rzędach; dotyczy to także podkładek tych samych odmian wysadzonych w różnych latach.

2. Czystość gatunkowa i odmianowa

Dla plantacji matecznych jest wymagana całkowita czystość gatunkowa i odmianowa.

3. Wiek¹⁾:

1) mateczniki elitarne drzew ziarnkowych utrzymuje się do 8 lat, a drzew pestkowych do 6 lat;

2) mateczniki kwalifikowane drzew ziarnkowych utrzymuje się do 15 lat, a drzew pestkowych do 12 lat,

3) podkładki wegetatywne nie mogą być starsze niż dwuletnie.

4. Rozmnażanie

Materiał do założenia bazowych plantacji matecznych pozyskuje się z roślin przedbazowych otrzymanych z mikrorozmnażania, sadzonkowania albo z odkładów. Podkładki przeznaczone do założenia matecznika podkładek drzew ziarnkowych powinny być nie starsze niż dwuletnie. Do zakładania mateczników podkładek drzew pestkowych powinny być używane podkładki jednoroczne.

Materiał do założenia plantacji podkładek kwalifikowanych powinien pochodzić z plantacji elitarnych albo podkładek zakwalifikowanych jako elitarne.

5. Zdrowotność:

1) materiał szkółkarski podkładek wegetatywnych powinien być:

a) wolny od organizmów kwarantannowych,

b) praktycznie wolny od organizmów, które mogą obniżyć jego jakość, a w szczególności od organizmów wymienionych w części C w dziale II - na podstawie wizualnej oceny;

2) choroby wirusowe i wirusopodobne: podkładki wolne od organizmów wymienionych w dziale VIII ust. 1 uważa się za wolne od chorób wirusowych i wirusopodobnych.

6. Wymagania dodatkowe

Plantację przedstawia się do jednej oceny rocznie, która jest wykonywana w końcu lata albo na początku jesieni, przed zakończeniem wegetacji roślin.

W przypadku stwierdzenia nieprawidłowości możliwych do usunięcia może być wyznaczony termin dodatkowej oceny.

Każda odmiana podkładki powinna być oznaczona etykietami na początku rzędu lub kwatery.

IV. Plantacje podkładek generatywnych drzew owocowych

1. Izolacja przestrzenna:

1) podkładki generatywne roślin, które są porażane przez wirus ospowatości śliwy, powinny być położone w odległości nie mniejszej niż 250 m od dziko rosnących lub roślin uprawnych tych roślin;

2) podkładki generatywne roślin, które nie są porażane przez wirus ospowatości śliwy, powinny być położone w odległości nie mniejszej niż 10 m od dziko rosnących lub roślin uprawnych tych roślin;

3) podkładki wolne od wirusów powinny być położone w odległości nie mniejszej niż 2 m od innych podkładek;

4) podkładki różnych gatunków i odmian powinny rosnąć w oddzielnych rzędach lub kwaterach.

2. Czystość gatunkowa i odmianowa

Na plantacjach podkładek generatywnych jest wymagana całkowita czystość gatunkowa i odmianowa.

3. Rozmnażanie

Nasiona do uzyskania podkładek pobiera się z elitarnych lub kwalifikowanych sadów nasiennych.

4. Wiek

Podkładki generatywne nie mogą być starsze niż dwuletnie.

5. Zdrowotność:

1) materiał szkółkarski podkładek generatywnych powinien być:

a) wolny od organizmów kwarantannowych,

b) praktycznie wolny od organizmów, które mogą obniżyć jego jakość, a w szczególności od organizmów wymienionych w części C dziale II - na podstawie wizualnej oceny;

2) choroby wirusowe i wirusopodobne:

a) podkładki generatywne drzew pestkowych wolne od patogenów wymienionych w dziale VIII ust. 1 uważa się za wolne od chorób wirusowych i wirusopodobnych,

b) podkładki generatywne jabłoni i gruszy uznaje się za wolne od chorób wirusowych i wirusopodobnych.

6. Wymagania dodatkowe

Plantację przedstawia się do jednej oceny rocznie, którą wykonuje się w końcu lata lub na początku jesieni, przed zakończeniem wegetacji roślin albo wiosną, a w przypadku pikówek na początku lata.

W przypadku stwierdzenia nieprawidłowości możliwych do usunięcia może być wyznaczony termin dodatkowej oceny.

Każdy gatunek i odmiana podkładki powinny być oznaczone etykietami na początku rzędu lub kwatery.

V. Sady do pozyskiwania nasion

1. Izolacja przestrzenna:

1) sady nasienne drzew pestkowych powinny być położone w odległości nie mniejszej niż 250 m od dziko rosnących lub roślin uprawnych drzew i krzewów pestkowych tych samych rodzajów;

2) sady nasienne drzew ziarnkowych powinny być położone w odległości nie mniejszej niż 50 m od dziko rosnących lub roślin uprawnych drzew i krzewów ziarnkowych tych samych rodzajów;

3) sady nasienne drzew ziarnkowych wolnych od wirusów powinny być wysadzane w oddzielnych kwaterach, a sady drzew pestkowych wolnych od wirusów - w oddzielnych kwaterach, z zachowaniem izolacji 500 m albo 250 m od dziko rosnących lub roślin uprawnych drzew i krzewów ziarnkowych albo pestkowych tych samych rodzajów.

2. Czystość gatunkowa i odmianowa:

1) wymagana jest całkowita czystość gatunkowa i odmianowa;

2) drzewa odmian zapylających oznacza się trwale.

3. Rozmnażanie - sady nasienne zakłada się z drzewek elitarnych przeznaczonych dla sadów nasiennych. Drzewa odmian zapylających powinny być o identycznej zdrowotności jak drzewa do pozyskiwania nasion.

4. Wiek

Nie określa się wymagań dotyczących wieku sadu.

5. Zdrowotność:

1) drzewa nasienne i nasiona do produkcji podkładek generatywnych powinny być:

a) wolne od organizmów kwarantannowych,

b) praktycznie wolne od organizmów, które mogą obniżyć jakość materiału szkółkarskiego, a w szczególności od organizmów wymienionych w części C dziale II - na podstawie wizualnej oceny;

2) choroby wirusowe i wirusopodobne:

a) drzewa nasienne i nasiona wolne od patogenów wymienionych w dziale VIII ust. 1 uważa się za wolne od chorób wirusowych i wirusopodobnych,

b) sady nasienne drzew pestkowych wolnych od wirusów, dla których jest zachowana izolacja przestrzenna 500 m, powinny być co sześć lat badane na choroby wirusowe niekwarantannowe, przenoszone przez pyłek i inne wektory; pierwsze testowanie wykonuje się na trzyletnich drzewkach,

c) sady nasienne drzew pestkowych wolnych od wirusów, dla których jest zachowana izolacja przestrzenna 250 m, powinny być co cztery lata badane na choroby wirusowe niekwarantannowe, przenoszone przez pyłek i inne wektory; pierwsze badanie wykonuje się na trzyletnich drzewkach,

d) w przypadku wykrycia wirusów podczas badań okresowych chore drzewa powinny być usunięte i badanie powinno być powtórzone w następnym roku, aż do uzyskania negatywnych wyników dla całego sadu; po tym okresie badania wykonuje się w sposób określony w lit. b albo c.

6. Wymagania dodatkowe

Plantację przedstawia się do jednej oceny rocznie: drzewa ziarnkowe w okresie dojrzewania owoców, a drzewa pestkowe przed zbiorem owoców.

W przypadku stwierdzenia nieprawidłowości możliwych do usunięcia może być wyznaczony termin dodatkowej oceny.

Każdy gatunek i odmiana powinny być oznaczone etykietami na początku rzędu lub kwatery.

VI. Sady do pozyskiwania zrazów lub oczek

1. Izolacja przestrzenna:

1) sady zraźnikowe roślin, które są porażane przez wirus ospowatości śliwy, powinny być położone w odległości nie mniejszej niż 250 m od dziko rosnących lub roślin uprawnych tych roślin;

2) sady zraźnikowe roślin, które nie są porażane przez wirus ospowatości śliwy, powinny być położone w odległości nie mniejszej niż 50 m od dziko rosnących lub roślin uprawnych tych roślin;

3) w sadzie zraźnikowym różne odmiany tego samego gatunku powinny być wysadzone w:

a) oddzielnych rzędach lub w jednym rzędzie,

b) odległości 2 m od siebie, trwale oznaczone;

4) sady zraźnikowe wolne od wirusów powinny być wysadzone w oddzielnych kwaterach z zachowaniem izolacji 3 m.

2. Czystość gatunkowa i odmianowa

Wymagana jest całkowita czystość gatunkowa i odmianowa.

3. Rozmnażanie - sady do pozyskiwania zrazów lub oczek są zakładane z drzewek elitarnych przeznaczonych dla sadów zraźnikowych.

4. Wiek:

1) elitarne sady zraźnikowe drzew pestkowych utrzymuje się do 6 lat, a drzew ziarnkowych do 8 lat;

2) kwalifikowane sady zraźnikowe drzew pestkowych utrzymuje się do 8 lat, a drzew ziarnkowych do 10 lat;

3) drzewa zraźnikowe, z wyjątkiem drzew pestkowych, mogą owocować.

5. Zdrowotność:

1) drzewa zraźnikowe i zrazy (oczka) powinny być:

a) wolne od organizmów kwarantannowych,

b) praktycznie wolne od organizmów, które mogą obniżyć ich jakość, a w szczególności od organizmów wymienionych w części C dziale II - na podstawie wizualnej oceny;

2) choroby wirusowe i wirusopodobne: drzewa zraźnikowe i zrazy lub oczka wolne od patogenów wymienionych w dziale VIII ust. 1 uważa się za wolne od chorób wirusowych i wirusopodobnych.

6. Wymagania dodatkowe

Plantację przedstawia się do jednej oceny rocznie, przeprowadzanej w czerwcu lub lipcu, bezpośrednio przed pozyskiwaniem zrazów lub oczek.

W przypadku stwierdzenia nieprawidłowości możliwych do usunięcia może być wyznaczony termin dodatkowej oceny.

Każdy gatunek i odmiana powinny być oznaczone etykietą na początku rzędu lub kwatery.

VII. Szkółki drzewek i plantacje uszlachetnionych podkładek

1. Izolacja przestrzenna:

1) szkółki drzewek i plantacje uszlachetnionych podkładek roślin, które są porażane przez wirus ospowatości śliwy, powinny być położone w odległości nie mniejszej niż 250 m od dziko rosnących lub roślin uprawnych tych roślin;

2) szkółki drzewek i plantacje uszlachetnionych podkładek roślin, które nie są porażane przez wirus ospowatości śliwy, powinny być położone w odległości nie mniejszej niż 10 m od dziko rosnących lub roślin uprawnych tych roślin;

3) szkółki drzewek i plantacje uszlachetnionych podkładek wolnych od wirusów powinny być położone w odległości nie mniejszej niż 2 m od innych drzewek i plantacji uszlachetnionych podkładek.

2. Czystość gatunkowa i odmianowa

W szkółkach i na plantacjach uszlachetnionych podkładek jest wymagana całkowita czystość gatunkowa i odmianowa.

Zastosowanie do uszlachetniania drzewek niewłaściwych podkładek, wstawek, przewodnich i pośrednich powodujących objawy niezgodności dyskwalifikuje drzewka odmian z objawami niezgodności (żółknięcie i opadanie liści oraz wyraźne przebarwienie kory).

3. Rozmnażanie

Szkółki zakłada się z materiału elitarnego albo kwalifikowanego przeznaczonego dla szkółek.

4. Wiek:

1) drzewka elitarne nie mogą być starsze niż dwuletnie, jeżeli nie owocowały;

2) drzewka kwalifikowane nie mogą być starsze niż czteroletnie.

5. Zdrowotność:

1) drzewka albo uszlachetnione podkładki powinny być:

a) wolne od organizmów kwarantannowych,

b) praktycznie wolne od organizmów, które mogą obniżyć ich jakość, a w szczególności od organizmów wymienionych w części C dziale II - na podstawie wizualnej oceny;

2) choroby wirusowe i wirusopodobne: drzewka wolne od patogenów wymienionych w dziale VIII ust. 1 uważa się za wolne od chorób wirusowych i wirusopodobnych.

6. Wymagania dodatkowe

Plantację przedstawia się do jednej oceny rocznie, którą wykonuje się w końcu lata albo na początku jesieni, przed zakończeniem wegetacji roślin albo przed sprzedażą roślin utrzymywanych w pojemnikach.

W przypadku stwierdzenia nieprawidłowości możliwych do usunięcia może być wyznaczony termin dodatkowej oceny.

Każdy gatunek i odmiana powinny być oznaczone etykietami na początku rzędu lub kwatery.

VIII. Zdrowotność kwalifikowanego materiału szkółkarskiego

1. Wykaz wirusów i fitoplazm oraz chorób wirusowych i wirusopodobnych dla materiału szkółkarskiego o statusie zdrowotności "wolne od wirusów"²⁾

Materiał ten oznacza się "ww" - wolne od wirusów albo "vf" - virus free.

Materiał ten powinien być wolny od wszystkich wirusów i patogenów wirusopodobnych, a zwłaszcza:

1) jabłoń od:

a) wirusa chlorotycznej plamistości liści jabłoni (Apple chlorotic leaf spot virus),

b) wirusa mozaiki jabłoni (Apple mosaic virus),

c) wirusa żłobkowatości pnia jabłoni (Apple stem grooving virus),

d) wirusa jamkowatości pnia jabłoni (Apple stem pitting virus) wywołującego epinastię i zamieranie kory "Spy" (Spay epinasty and decline),

e) fitoplazmy proliferacji jabłoni (Apple proliferation phytoplasma),

f) drobnienia owoców jabłoni (Apple chat fruit),

g) zielonej marszczycy jabłek (Apple green crinkle),

h) podkówkowatego spękania jabłoni (Apple horseshoe wound),

i) szorstkości skórki jabłek (Apple rough skin),

j) gwiaździstego spękania jabłek (Apple star crack),

k) plamistości pierścieniowej jabłek (Apple ring spot),

l) pierścieniowego ordzawienia jabłek (Apple russet ring),

m) gumowatości drewna jabłoni (Apple rubbery wood),

n) spłaszczenia konarów jabłoni (Apple flat limb),

o) rdzawej brodawkowatości jabłek (Apple russet wart),

p) Spy epinasty and decline,

r) łuszczenia się kory Malus platycarpa - (Platycarpa scaly bark);

2) grusza i pigwa od:

a) wirusa chlorotycznej plamistości liści jabłoni (Apple chlorotic leaf spot virus),

b) wirusa jamkowatości pnia jabłoni (Apple stem pitting virus = Pear vein yellows virus),

c) fitoplazmy zamierania gruszy (Pear decline phytoplasma),

d) wiroida pęcherzowatych zrakowaceń gruszy (Pear blister canker viroid),

e) spękania kory (Pear bark split),

f) nekrozy kory (Pear bark necrosis),

g) szorstkości kory (Pear rough bark),

h) sadzowatej pierścieniowej plamistości pigwy (Quince sooty ringspot),

i) gumowatości drewna (Apple rubbery wood),

j) żółtej plamistości pigwy (Quince yellow blotch),

k) kamienistości miąższu gruszek (Pear stony pit);

3) wiśnia i czereśnia od:

a) wirusa chlorotycznej plamistości liści jabłoni (Apple chlorotic leaf spot virus),

b) wirusa mozaiki jabłoni (Apple mosaic virus),

c) wirusa mozaiki gęsiówki (Arabic mosaic virus),

d) wirusa zielonej pierścieniowej pstrości czereśni (Cherry green ring mottle virus),

e) wirusa liściozwoju czereśni (Cherry leaf roll virus),

f) wirusa drobnienia czereśni 1 i 2 (Little cherry virus 1, Little cherry virus 2),

g) wirusa karłowatości śliwy = żółtaczki wiśni (Prune dwarf virus),

h) wirusa nekrotycznej pierścieniowej plamistości wiśni (Prunus necrotic ringspot virus),

i) wirusa cętkowanej plamistości liści czereśni (Cherry mottle leaf virus),

j) wirusa pierścieniowej plamistości maliny (Raspberry ringspot virus),

k) utajonego wirusa pierścieniowej plamistości truskawki (Strawberry latent ringspot virus),

l) wirusa czarnej pierścieniowej plamistości pomidora (Tomato black ring virus),

m) fitoplazmy europejskiej żółtaczki drzew pestkowych (European stone fruit yellows phytoplasma),

n) rdzawej pstrości czereśni (Cherry rusty mottle),

o) nekrotyczno-rdzawej plamistości czereśni (Cherry necrotic rusty mottle),

p) Detrimental canker,

r) Shirofugen stunt;

4) śliwa od:

a) wirusa chlorotycznej plamistości liści jabłoni (Apple chlorotic leaf spot virus),

b) wirusa mozaiki jabłoni (Apple mosaic virus),

c) utajonego wirusa pierścieniowej plamistości mirabelki (Myrobalan latent ringspot virus),

d) wirusa ospowatości śliwy (Plum pox virus),

e) wirusa karłowatości śliwy = żółtaczki wiśni (Prune dwarf virus),

f) wirusa nekrotycznej pierścieniowej plamistości wiśni (Prunus necrotic ringspot virus),

g) fitoplazmy europejskiej żółtaczki drzew pestkowych (European stone fruit yellows phytoplasma);

5) brzoskwinia od:

a) wirusa chlorotycznej plamistości liści jabłoni (Apple chlorotic leaf spot virus),

b) wirusa mozaiki jabłoni (Apple mosaic virus),

c) wirusa zielonej pierścieniowej pstrości czereśni (Cherry green ring mottle virus),

d) wirusa ospowatości śliwy (Plum pox virus),

e) wirusa karłowatości śliwy = żółtaczki wiśni (Prune dwarf virus),

f) wirusa nekrotycznej pierścieniowej plamistości wiśni (Prunus necrotic ringspot virus),

g) utajonego wirusa pierścieniowej plamistości truskawki (Strawberry latent ringspot virus),

h) wirusa czarnej pierścieniowej plamistości pomidora (Tomato black ring virus),

i) fitoplazmy europejskiej żółtaczki drzew pestkowych (European stone fruit yellows phytoplasma),

j) utajonego wiroida mozaiki brzoskwini (Peach latent mosaic viroid),

k) gwiaździstej plamistości brzoskwini (Peach asteroid spot);

6) morela od:

a) wirusa chlorotycznej plamistości liści jabłoni (Apple chlorotic leaf spot virus),

b) wirusa mozaiki jabłoni (Apple mosaic virus),

c) wirusa ospowatości śliwy (Plum pox virus),

d) wirusa karłowatości śliwy = żółtaczki wiśni (Prune dwarf virus),

e) wirusa nekrotycznej pierścieniowej plamistości wiśni (Prunus necrotic ringspot virus),

f) fitoplazmy europejskiej żółtaczki drzew pestkowych (European stone fruit yellows phytoplasma),

g) gwiaździstej plamistości brzoskwini (Peach asteroid spot).

IX. Plantacje mateczne i szkółki sadzonek truskawki

1. Rozmnażanie

Dla truskawki stosuje się cztery stopnie kwalifikacji:

1) superelita (SE) - materiał przedbazowy;

2) elita 1 (E1) - materiał bazowy;

3) elita 2 (E2) - materiał bazowy;

4) oryginał (O) - materiał kwalifikowany.

2. Izolacja przestrzenna

Elitarne plantacje i szkółki sadzonek powinny być położone w odległości nie mniejszej niż 200 m od roślin dziko rosnących lub roślin uprawnych z rodzaju Fragaria spp., a plantacje i szkółki kwalifikowane w odległości nie mniejszej niż 50 m od roślin dziko rosnących lub roślin uprawnych z rodzaju Fragaria spp. Odstępy między odmianami, stopniami kwalifikacji lub kategoriami nie powinny być mniejsze niż 3 m.

3. Czystość gatunkowa i odmianowa

Wymagana jest całkowita czystość gatunkowa i odmianowa.

4. Wiek

Plantacje truskawki mogą być prowadzone przez rok.

Do produkcji sadzonek wielokoronowych w szkółkach sadzonek (zielonych, pojemnikowych, podwójnych frigo) dopuszcza się używanie sadzonek zielonych, pojemnikowych lub sadzonek frigo. Sadzonki wielokoronowe wytwarzane w szkółkach sadzonek: zielone, pojemnikowe, frigo i podwójne frigo są oceniane w stopniu kwalifikacji dla sadzonek otrzymanych po rozmnażaniu na plantacji matecznej sadzonek.

Na polu przeznaczonym do założenia plantacji lub szkółki truskawki nie mogą być uprawiane truskawki, ziemniaki, ogórki, pomidory, len, porzeczki, agrest, maliny i jeżyny co najmniej przez:

1) 4 lata przed jej założeniem;

2) 2 lata przed jej założeniem, jeżeli:

a) pole to zostanie odkażone, w roku poprzedzającym założenie plantacji lub szkółki truskawki, preparatami do dezynfekcji gleby lub

b) na polu zastosuje się przynajmniej 2 cykle uprawy na przyoranie gorczycy sarepskiej, w roku poprzedzającym założenie plantacji lub szkółki truskawki.

5. Zdrowotność - rośliny mateczne i sadzonki truskawek powinny być:

1) wolne od organizmów kwarantannowych;

2) na podstawie wizualnej oceny - praktycznie wolne od organizmów, które mogą obniżyć ich jakość, w szczególności od organizmów wymienionych w części C dziale II oraz od:

a) wirusów i patogenów wirusopodobnych:

- wirusa mozaiki gęsiówki (Arabic mosaic virus),

- wirusa pierścieniowej plamistości maliny (Raspberry ringspot virus),

- wirusa czarnej plamistości pierścieniowej pomidora (Tomato black ring virus),

- wirusa marszczycy liści truskawki (Strawberry crinkle virus),

- utajonego wirusa pierścieniowej plamistości truskawki (Strawberry latent ringspot virus),

- wirusa żółtobrzeżności liści truskawki (Strawberry mild yellow edge virus),

- wirusa cętkowanej plamistości liści truskawki (Strawberry mottle virus),

- wirusa otaśmienia nerwów liści truskawki (Strawberry vein banding virus),

- fitoplazmy zielenienia płatków truskawki (Strawberry green petal phytoplasma),

- fitoplazmy żółtaczki astra (Aster yellows phytoplasma),

- patogena wywołującego żółtaczkę czerwcową (Strawberry june yellows),

b) chorób:

- zgnilizny korony truskawki (Phytophthora cactorum),

- werticiliozy truskawki (Verticillium dahliae),

- antraknozy (Colletotrichum spp.),

- białej plamistości liści truskawki (Mycosphaerella fragariae),

- mączniaka prawdziwego truskawki (Sphaerotheca macularis ssp. fragariae),

- czerwonej plamistości liści truskawki (Diplocarpon earliana),

c) szkodników:

- guzaków (Meloidogyne spp.),

- niszczyka zjadliwego (Ditylenchus dipsaci),

- węgorka chryzantemowca (Aphelenchoides ritzemabosi),

- węgorka truskawkowca (Aphelenchoides fragariae),

- roztocza truskawkowego (Phytonemus pallidus ssp. fragariae),

- mszyc (Aphididae),

- skoczkowatych (Jassidae),

- wciornastkowatych (Thripidae),

- przędziorka chmielowca (Tetranychus urticae).

6. Wymagania dodatkowe

Plantacje i szkółki przedstawia się do jednej oceny rocznie, wykonywanej latem albo jesienią, przed kopaniem sadzonek albo sprzedażą roślin utrzymywanych w pojemnikach.

W przypadku stwierdzenia nieprawidłowości możliwych do usunięcia może być wyznaczony termin dodatkowej oceny.

Każda odmiana powinna być oznaczona etykietami na początku rzędu lub kwatery.

X. Plantacje mateczne, szkółki porzeczek oraz agrestu

1. Rozmnażanie

Dla porzeczek, agrestu stosuje się cztery stopnie kwalifikacji:

1) superelita (SE) - materiał przedbazowy;

2) elita 1 (E1) - materiał bazowy;

3) elita 2 (E2) - materiał bazowy;

4) oryginał (O) - materiał kwalifikowany.

2. Izolacja przestrzenna:

1) mateczniki i szkółki elitarne powinny być położone w odległości nie mniejszej niż 300 m od roślin dziko rosnących lub roślin uprawnych z rodzaju Ribes;

2) mateczniki i szkółki kwalifikowane powinny być położone w odległości nie mniejszej niż 100 m od roślin dziko rosnących lub roślin uprawnych z rodzaju Ribes;

3) mateczniki porzeczki złotej powinny być położone w odległości nie mniejszej niż 100 m od roślin dziko rosnących lub roślin uprawnych z rodzaju Ribes;

4) mateczniki i szkółki różnych kategorii i stopni kwalifikacji powinny być oddalone od siebie co najmniej o 3 m.

3. Czystość gatunkowa i odmianowa

Wymagana jest całkowita czystość gatunkowa i odmianowa.

4. Wiek:

1) elitarne mateczniki porzeczek i agrestu utrzymuje się do 6 lat, a kwalifikowane - do 10 lat;

2) elitarne mateczniki porzeczki złotej utrzymuje się do 8 lat, a kwalifikowane - do 15 lat;

3) w szkółkach ocenie podlegają rośliny nie starsze niż trzyletnie.

5. Zdrowotność

Rośliny mateczne i sadzonki porzeczek i agrestu powinny być:

1) wolne od organizmów kwarantannowych;

2) praktycznie wolne od organizmów, które mogą obniżyć ich jakość, w szczególności od organizmów wymienionych w części C dziale II oraz od wirusów: Strawberry latent ringspot virus, Raspberry ringspot virus, Arabic mosaic virus, Goosberry vein banding virus, Cucumber mosaic virus, Black currant reversion virus - na podstawie wizualnej oceny;

3) praktycznie wolne od innych organizmów, które mogą obniżyć jakość materiału szkółkarskiego.

6. Wymagania dodatkowe:

1) mateczniki porzeczki i agrestu przedstawia się do dwóch ocen rocznie:

a) pierwsza jest wykonywana wiosną - na obecność wielkopąkowca porzeczkowego albo (przemiennie) rewersji dla porzeczek (koniec marca do końca kwitnienia porzeczek) oraz otaśmienia nerwów w matecznikach agrestu (maj, do połowy czerwca),

b) druga ocena jest wykonywana w drugiej połowie czerwca - przy rozmnażaniu przez sadzonki zielne i półzdrewniałe albo do końca sierpnia przy innych sposobach rozmnażania;

2) w matecznikach porzeczek należy corocznie pozostawić na każdym krzewie po jednym dobrze wyrośniętym pędzie owocującym w celu wykrycia ewentualnego porażenia przez wielkopąkowca i wirusa rewersji; po dokonaniu oceny pędy te mogą być wycięte;

3) plantacje mateczne porzeczki złotej przedstawia się do jednej oceny rocznie, którą wykonuje się na początku jesieni, nie później niż do końca września;

4) szkółki porzeczki i agrestu przedstawia się do jednej oceny rocznie, którą wykonuje się w sierpniu lub we wrześniu; na wniosek producenta rośliny utrzymywane w pojemnikach mogą być oceniane wcześniej.

W przypadku stwierdzenia nieprawidłowości możliwych do usunięcia może być wyznaczony termin dodatkowej oceny.

Każdy gatunek i odmiana powinny być oznaczone etykietami na początku rzędu lub kwatery.

XI. Plantacje mateczne i szkółki malin oraz jeżyn

1. Rozmnażanie

Dla malin i jeżyn stosuje się cztery stopnie kwalifikacji:

1) superelita (SE) - materiał przedbazowy;

2) elita 1 (E1) - materiał bazowy;

3) elita 2 (E2) - materiał bazowy;

4) oryginał (O) - materiał kwalifikowany.

2. Izolacja przestrzenna:

1) mateczniki i szkółki elitarne powinny być położone w odległości nie mniejszej niż 200 m od roślin dziko rosnących lub roślin uprawnych z rodzaju Rubus;

2) mateczniki i szkółki kwalifikowane powinny być położone w odległości nie mniejszej niż 50 m od roślin dziko rosnących lub roślin uprawnych z rodzaju Rubus;

3) odstępy między odmianami, stopniami kwalifikacji lub kategoriami nie powinny być mniejsze niż 3 m.

3. Czystość gatunkowa i odmianowa

Wymagana jest całkowita czystość gatunkowa i odmianowa.

4. Wiek:

1) mateczniki utrzymuje się do 5 lat;

2) odrosty korzeniowe w matecznikach nie mogą być starsze niż jednoroczne;

3) sadzonki w pojemnikach nie mogą być starsze niż dwuletnie.

5. Zdrowotność

Rośliny mateczne i sadzonki malin i jeżyn powinny być:

1) wolne od organizmów kwarantannowych;

2) na podstawie wizualnej oceny - praktycznie wolne od organizmów, które mogą obniżyć ich jakość, w szczególności od organizmów wymienionych w części C dziale II oraz od:

a) wirusów i patogenów wirusopodobnych:

- wirusa mozaiki gęsiówki (Arabic mosaic virus),

- wirusa pierścieniowej plamistości maliny (Raspberry ringspot virus),

- wirusa czarnej plamistości pierścieniowej pomidora (Tomato black ring virus),

- utajonego wirusa pierścieniowej plamistości truskawki (Strawberry latent ringspot virus),

- wirusów wywołujących mozaikę maliny (Raspberry mosaic),

- wirusa liściozwoju czereśni (Cherry leaf roll virus),

- wirusa karłowatości krzaczastej maliny (Raspberry bushy dwarf virus),

- fitoplazmy karłowatości maliny (Rubus stunt phytoplasma),

b) chorób grzybowych i bakteryjnych:

- zamierania pędów maliny (Didymella aplanata),

- werticyliozy (Verticillium spp.),

- mączniaka prawdziwego (Sphareotheca macularis),

- włosowatości korzeni (Agrobacterium rhizogenes),

- guzowatości korzeni (Agrobacterium tumefaciens),

- staśmienia łodyg (Rhodococcus fascians),

c) szkodników:

- korzeniaka szkodliwego (Pratylenchus penetrans),

- mszyc (Aphididae),

- przebarwiacza malinowego (Phyllocoptes gracilis),

- wciornastkowatych (Thripidae),

- skoczkowatych (Jassidae),

- przędziorka chmielowca (Tetranychus urticae).

6. Wymagania dodatkowe:

1) mateczniki przedstawia się do jednej oceny w roku, którą wykonuje się:

a) w czerwcu - dla pozyskiwania sadzonek zielnych,

b) do połowy września - dla pozostałych mateczników;

2) plantacje mateczne należy prowadzić bez pędów owocujących; owocowanie odmian powtarzających jest dopuszczalne;

3) szkółki w pojemnikach przedstawia się do jednej oceny w roku, którą wykonuje się w końcu lata; owocowanie odmian powtarzających jest dopuszczalne.

Na wniosek producenta rośliny utrzymywane w pojemnikach mogą być oceniane wcześniej. W przypadku stwierdzenia nieprawidłowości możliwych do usunięcia może być wyznaczony termin dodatkowej oceny.

Każdy gatunek i odmiana powinny być oznaczone etykietami na początku rzędu lub kwatery.

XII. Plantacje mateczne i szkółki borówki oraz żurawiny wielkoowocowej

1. Rozmnażanie

Dla plantacji matecznych i sadzonek stosuje się cztery stopnie kwalifikacji:

1) superelita (SE) - materiał przedbazowy:

2) elita 1 (E1) - materiał bazowy;

3) elita 2 (E2) - materiał bazowy;

4) oryginał (O) - materiał kwalifikowany.

2. Izolacja przestrzenna:

1) mateczniki i szkółki elitarne powinny być położone w odległości nie mniejszej niż 50 m od roślin dziko rosnących lub roślin uprawnych z rodzaju Vaccinium spp.;

2) mateczniki i szkółki kwalifikowane powinny być położone w odległości nie mniejszej niż 20 m od roślin dziko rosnących lub roślin uprawnych z rodzaju Vaccinium spp.;

3) mateczniki i szkółki elitarne od mateczników i szkółek kwalifikowanych są oddalone co najmniej o 3 m.

3. Czystość odmianowa

Wymagana jest całkowita czystość odmianowa.

4. Wiek:

1) elitarne mateczniki borówki wysokiej i żurawiny wielkoowocowej utrzymuje się przez 10 lat, a kwalifikowane przez 15 lat;

2) w szkółkach ocenie podlegają rośliny nie starsze niż trzyletnie.

5. Zdrowotność

Rośliny mateczne i sadzonki borówki oraz żurawiny wielkoowocowej powinny być:

1) wolne od organizmów kwarantannowych;

2) na podstawie wizualnej oceny - praktycznie wolne od patogenów, chorób i szkodników wymienionych w części C dziale II oraz od:

a) szkodników, którymi są mszyce (Aphis spp.),

b) szkodników borówki:

- pryszczarka borówkowca (Dasyneura vaccinii),

- szpeciela pączkowego (Acalitus vaccinii),

- zwójki różóweczki (Archip. rosanus),

c) choroby bakteryjnej, którą jest guzowatość korzeni (Agrobacterium tumefaciens),

d) chorób grzybowych:

- zgorzeli pędów borówki (Godronia cassandrae),

- zgnilizny korzeni (Phytophthora spp.),

- zamierania wierzchołków pędów żurawiny (Phomopsis vaccinii),

- zamierania pędów borówki (Botryosphaeria dothidea),

- różowatości kwiatów (Exobasidium oxycocci),

e) wirusów i patogenów wirusopodobnych:

- wirusa nitkowatości borówki (Blueberry shoestring virus),

- fitoplazmy miotlastości borówki (Blueberry witches broom phytoplasma),

- wirusa pierścieniowej plamistości tytoniu (Tobacco ringspot virus);

3) praktycznie wolne od innych organizmów, które mogą obniżyć jakość materiału szkółkarskiego.

6. Wymagania dodatkowe

Po wejściu roślin matecznych w owocowanie sprawdza się tożsamość odmianową w okresie kwitnienia i owocowania:

1) mateczniki borówki i żurawiny wielkoowocowej przedstawia się do dwóch ocen rocznie, które wykonuje się:

a) wiosną (maj, do końca czerwca) - na obecność chorób wirusowych,

b) w drugiej połowie czerwca - przy rozmnażaniu przez sadzonki zielne i półzdrewniałe albo do końca sierpnia przy innych sposobach rozmnażania;

2) szkółki borówki i żurawiny wielkoowocowej przedstawia się do jednej oceny rocznie, którą wykonuje się w sierpniu lub we wrześniu.

Na wniosek producenta rośliny utrzymywane w pojemnikach mogą być oceniane wcześniej.

W przypadku stwierdzenia nieprawidłowości możliwych do usunięcia może być wyznaczony termin dodatkowej oceny.

Każdy gatunek i odmiana powinny być oznaczone etykietami na początku rzędu lub bloku.

XIII. Pozostałe gatunki

1. Izolacja przestrzenna

Rośliny tych gatunków powinny rosnąć w odległości co najmniej 10 m od dziko rosnących lub owocujących roślin tego samego gatunku lub rodzaju.

2. Czystość gatunkowa i odmianowa

Wymagana jest całkowita czystość gatunkowa i odmianowa.

3. Zdrowotność:

1) materiał szkółkarski tych gatunków powinien być:

a) wolny od organizmów kwarantannowych,

b) praktycznie wolny od organizmów, które mogą obniżyć jakość materiału szkółkarskiego, a w szczególności od organizmów wymienionych w części C dziale II; na podstawie wizualnej oceny;

2) choroby wirusowe i wirusopodobne roślin cytrusowych:

a) materiał powinien pochodzić z materiału wyjściowego, który został skontrolowany i uznany za niewykazujący objawów chorób wirusów i wirusopodobnych;

b) powinien zostać poddany indywidualnemu badaniu z użyciem metod do wykrywania takich wirusów i patogenów wirusopodobnych lub chorób i zostać uznany za wolny od nich,

c) materiał powinien być skontrolowany i zostać uznany za wolny od takich wirusów i patogenów wirusopodobnych lub chorób od ostatniego cyklu wegetacyjnego,

d) materiał powinien zostać zaszczepiony na podkładki inne niż podatne na wiroidy - w przypadku szczepienia.

4. Wymagania dodatkowe

Plantację przedstawia się do jednej oceny rocznie, którą wykonuje się w końcu lata albo na początku jesieni, przed zakończeniem wegetacji roślin.

W przypadku stwierdzenia nieprawidłowości możliwych do usunięcia może być wyznaczony termin dodatkowej oceny.

Każdy gatunek i odmiana powinny być oznaczone etykietami na początku rzędu lub kwatery.

B. Jakość elitarnego i kwalifikowanego materiału szkółkarskiego roślin sadowniczych

I. Elitarny i kwalifikowany materiał szkółkarski powinien spełniać wymagania jakościowe:

1) pełnej czystości gatunkowej i odmianowej;

2) właściwego wyglądu gatunku i odmiany;

3) być praktycznie wolny od uszkodzeń fizycznych, mechanicznych albo chemicznych;

4) być praktycznie wolny od jakichkolwiek wad wynikających z rozmnażania, które mogłyby obniżyć jego przydatność i jakość;

5) być przygotowany w postaci jednorodnych partii; w przypadku łączenia partii zachowuje się dane o składzie partii i pochodzeniu poszczególnych składników;

6) być wolny od organizmów kwarantannowych;

7) być praktycznie wolny od patogenów, chorób i organizmów wymienionych w części C dziale II;

8) być praktycznie wolny od innych organizmów, które mogą obniżyć jakość materiału szkółkarskiego.

II. Elitarny i kwalifikowany materiał szkółkarski powinien spełniać minimalne wymagania jakościowe:

1. Dla drzewek owocowych:

1) wysokość powinna wynosić nie mniej niż 80 cm, mierząc od szyjki korzeniowej;

2) średnica pnia powinna wynosić nie mniej niż 8 mm, mierząc na wysokości 10 cm powyżej miejsca uszlachetniania;

3) powinny mieć korzeń główny i nie mniej niż 3 korzenie boczne albo wiązkę korzeni drobnych, albo korzenie przerastające całą objętość gleby w pojemniku.

2. Dla krzewów jagodowych, z wyłączeniem borówki i żurawiny wielkoowocowej:

1) powinny mieć minimum jeden pęd o długości co najmniej 20 cm, mierząc od nasady do jego wierzchołka, albo dobrze wykształcone pąki nasadowe;

2) średnica pędu powinna wynosić nie mniej niż 4 mm, mierząc u nasady pędu;

3) powinny mieć nie mniej niż 3 korzenie szkieletowe albo wiązkę korzeni drobnych, albo korzenie przerastające całą objętość gleby w pojemniku.

3. Dla sadzonek borówki i żurawiny wielkoowocowej:

1) powinny mieć minimum jeden pęd o długości co najmniej 20 cm, a w przypadku sadzonek żurawiny wielkoowocowej - 10 cm, mierząc pęd główny od nasady do jego wierzchołka;

2) średnica pędu powinna wynosić nie mniej niż 3 mm, a w przypadku sadzonek żurawiny wielkoowocowej - 1 mm, mierząc pęd na wysokości 5 cm od jego nasady;

3) powinny mieć wiązkę korzeni drobnych albo korzenie przerastające całą objętość gleby w pojemniku.

4. Dla sadzonek truskawek:

1) powinny mieć co najmniej dwa w pełni wykształcone liście albo średnicę korony o grubości nie mniejszej niż 4 mm;

2) powinny mieć nie mniej niż 4 korzenie szkieletowe albo wiązkę korzeni drobnych, albo korzenie przerastające całą objętość gleby w pojemniku.

5. Dla podkładek generatywnych i wegetatywnych:

1) wysokość dla podkładek wegetatywnych powinna wynosić nie mniej niż 30 cm, mierząc od nasady pędu do jego wierzchołka;

2) wysokość dla podkładek generatywnych powinna wynosić nie mniej niż 20 cm, mierząc od szyjki korzeniowej do wierzchołka pędu;

3) średnica powinna wynosić nie mniej niż 3 mm, mierząc bezpośrednio nad szyjką korzeniową;

4) powinny mieć nie mniej niż 3 korzenie szkieletowe albo wiązkę korzeni drobnych, albo korzenie przerastające całą objętość gleby w pojemniku.

6. Dla zrazów:

1) długość powinna wynosić nie mniej niż 30 cm;

2) średnica powinna wynosić nie mniej niż 4 mm;

3) powinny mieć co najmniej 5 oczek.

7. Dla innych sadzonek:

1) długość powinna wynosić nie mniej niż 12 cm;

2) średnica powinna wynosić nie mniej niż 4 mm;

3) powinny mieć co najmniej 3 oczka.

8. Dla oczek - powinna być określona liczba wykształconych oczek.

9. Dostawcy mogą zgodnie z minimalnymi wymaganiami ustalać własne klasy jakości dla materiału szkółkarskiego wprowadzanego do obrotu.

C. Minimalne wymagania dla materiału szkółkarskiego kategorii CAC

I. Materiał szkółkarski kategorii CAC powinien spełniać wymagania jakościowe:

1) odpowiedniej czystości gatunkowej i odmianowej;

2) właściwego wyglądu gatunku i odmiany;

3) być praktycznie wolny od uszkodzeń fizycznych, mechanicznych albo chemicznych;

4) być praktycznie wolny od jakichkolwiek wad wynikających z rozmnażania, które mogłyby obniżyć jego przydatność i jakość;

5) być przygotowany w postaci jednorodnych partii; w przypadku łączenia partii zachowuje się dane o składzie partii i pochodzeniu poszczególnych składników;

6) być wolny od organizmów kwarantannowych;

7) być praktycznie wolny od patogenów, chorób i organizmów wymienionych w dziale II;

8) być praktycznie wolny od innych organizmów, które mogą obniżyć jakość materiału szkółkarskiego;

9) sprawdzenia wymagań dotyczących wytwarzania i jakości materiału szkółkarskiego CAC dokonuje wojewódzki inspektor ochrony roślin i nasiennictwa podczas kontroli co najmniej raz w danym cyklu produkcji, nie rzadziej niż raz w roku.

II. Wykaz organizmów szkodliwych obniżających jakość materiału szkółkarskiego

1. Lima Citrus aurantifolia (Christm) Swing, cytryna zwyczajna Citrus limon L. Burm. F, grejpfrut Citrus paradisi Maef, mandarynka Citrus reticulata Blanco, pomarańcza chińska Citrus sinensis (L.) Osbeck

1) szkodniki:

a) Aleurotrixus floccosus (Mashell),

b) mątwiki Meloidogyne spp.,

c) Parabernisia myricae (Kuwana),

d) Tylenchulus semipenetrans;

2) choroby grzybowe: Phytophthora spp.;

3) choroby wirusowe i wirusopodobne:

a) Citrus leaf rugose,

b) choroby, które wywołują psorosis i podobne objawy na młodych liściach, jak: psorosis, ring spot, cristacortis, impietratura, concave gum,

c) ich czynniki sprawcze,

d) wirody takie, jak: exocortis, cachexiaxyloporosis.

2. Leszczyna (Corylus avellana L.)

1) szkodniki:

a) wielkopąkowiec leszczynowy (Phytoptus avellanae),

b) tarczniki (Quadraspidiotus perniciosus, Epidiaspis leperii, Pseudaulacaspis pentagona);

2) choroby bakteryjne:

a) guzowatość korzeni (Agrobacterium tumefaciens),

b) bakteryjna zgorzel leszczyny (Xanthomonas campestris pv. corylina);

3) choroby grzybowe:

a) opieńka miodowa (Armillariella mellea),

b) srebrzystość liści (Chondrostereum purpureum),

c) rak drzew owocowych (Nectria galligena),

d) Phyllactina guttata,

e) werticilioza (Verticillium spp.);

4) choroby wirusowe i wirusopodobne:

a) mozaika leszczyny (Apple mosaic virus),

b) Hazel maculatura lineare - MLO.

3. Pigwa (Cydonia Miller), grusza (Pyrus communis L.)

1) szkodniki:

a) skośnik brzoskwiniaczek (Anarsia lineatella),

b) bawełnica korówka (Eriosoma lanigerum),

c) tarczniki (Quadraspidiotus perniciosus, Epidiaspis leperii, Pseudaulacaspis pentagona i inne);

2) choroby bakteryjne:

a) guzowatość korzeni (Agrobacterium tumefaciens),

b) rak bakteryjny (Pseudomonas syringae pv. syringae);

3) choroby grzybowe:

a) opieńka miodowa (Armillariella mellea),

b) srebrzystość liści (Chondrostereum purpureum),

c) rak drzew owocowych (Nectria galligena, Phytophthora spp.),

d) biała zgnilizna korzeni (Rosellinia necatrix),

e) werticilioza (Verticillium spp.);

4) choroby wirusowe i wirusopodobne - wszystkie.

4. Truskawka (Fragaria x ananassa Duch.)

1) szkodniki:

a) węgorki (Apchelenchoides spp.),

b) niszczyk zjadliwy (Ditylenchus dipsaci),

c) Tarsonemidae;

2) choroby grzybowe:

a) zgnilizna korony truskawki (Phytophthora cactorum),

b) werticilioza (Verticillium spp.);

3) choroby wirusowe i wirusopodobne: zielenienie płatków truskawki (Strawberry green petal phytoplasma MLO).

5. Orzech włoski (Juglans regia L.)

1) szkodniki: tarczniki (Quadraspidiotus perniciosus, Epidiaspis leperii, Pseudaulacaspis pentagona i inne);

2) choroby bakteryjne:

a) guzowatość korzeni (Agrobacterium tumefaciens),

b) bakteryjna zgorzel orzecha włoskiego (Xanthomonas campestris pv. juglandi);

3) choroby grzybowe:

a) opieńka miodowa (Armillariella mellea),

b) rak drzew owocowych (Nectria galligena),

c) srebrzystość liści (Chondrostereum purpureum),

d) zgnilizna podstawy pnia (Phytophthora spp.);

4) choroby wirusowe i wirusopodobne: liściozwój czereśni (Cherry leaf roll virus).

6. Jabłoń (Malus Mill.)

1) szkodniki:

a) skośnik brzoskwiniaczek (Anarsia lineatella),

b) bawełnica korówka (Eriosoma lanigerum),

c) tarczniki (Quadraspidiotus perniciosus, Epidiaspis leperii, Pseudaulacaspis pentagona i inne);

2) choroby bakteryjne:

a) guzowatość korzeni (Agrobacterium tumefaciens),

b) rak bakteryjny (Pseudomonas syringae pv. syringae);

3) choroby grzybowe:

a) opieńka miodowa (Armillariella mellea),

b) srebrzystość liści (Chondrostereum purpureum),

c) rak drzew owocowych (Nectria galligena),

d) zgnilizna pierścieniowa podstawy pnia (Phytophthora cactorum),

e) biała zgnilizna korzeni (Rosellinia necatrix),

f) parch (Venturia spp.),

g) werticilioza (Verticillium spp.);

4) choroby wirusowe i wirusopodobne - wszystkie.

7. Oliwka europejska (Olea europaea L.)

1) szkodniki:

a) Eusophera pinguis,

b) guzaki (Meloidogyne spp.),

c) Saissetia oleae;

2) choroby grzybowe i bakteryjne:

a) Verticillium dabliae,

b) Pseudomonas syringae pv. savastanoi;

3) choroby wirusowe i wirusopodobne - wszystkie.

8. Pistacja właściwa (Pistacia vera L.)

1) choroby grzybowe i bakteryjne: Verticillium spp.;

2) choroby wirusowe i wirusopodobne - wszystkie.

9. Śliwa (Prunus domestica L.), śliwa japońska (Prunus salicina Lindl.)

1) szkodniki:

a) pordzewiacz śliwowy (Aculus fockeui),

b) czerniec ciemny (Capnodis tenebrionis),

c) szpeciel śliwowy (Eriophyes similis),

d) guzaki (Meloidogyne spp.),

e) tarczniki (Quadraspidiotus perniciosus, Epidiaspis leperii, Pseudaulacaspis pentagona i inne);

2) choroby bakteryjne:

a) guzowatość korzeni (Agrobacterium tumefaciens),

b) rak bakteryjny drzew pestkowych (Pseudomonas syringae pv. syringae, Pseudomonas syringae pv. mors prunorum);

3) choroby grzybowe:

a) opieńka miodowa (Armillariella mellea),

b) srebrzystość liści (Chondrostereum purpureum),

c) rak drzew owocowych (Nectria galligena),

d) biała zgnilizna korzeni (Rosellinia necatrix),

e) werticilioza (Verticillium spp.);

4) choroby wirusowe i wirusopodobne:

a) karłowatość śliwy (Prune dwarf virus),

b) nekrotyczna plamistość pierścieniowa wiśni (Prunus necrotic ringspot virus).

10. Brzoskwinia (Prunus persica (L.) Batsch), morela (Prunus armeniaca L.), migdałowiec (Prunus amygdalus Batsch)

1) szkodniki:

a) skośnik brzoskwiniaczek (Anarsia lineatella),

b) czerniec ciemny (Capnodis tenebrionis),

c) guzaki (Meloidogyne spp.),

d) tarczniki (Quadraspidiotus perniciosus, Epidiaspis leperii, Pseudaulacaspis pentagona i inne);

2) choroby bakteryjne:

a) guzowatość korzeni (Agrobacterium tumefaciens),

b) rak bakteryjny drzew pestkowych (Pseudomonas syringae pv. syringae, Pseudomonas syringae pv. mors prunorum);

3) choroby grzybowe:

a) opieńka miodowa (Armillariella mellea),

b) srebrzystość liści (Chondrostereum purpureum),

c) rak drzew owocowych (Nectria galligena),

d) biała plamistość korzeni (Rosellinia necatrix),

e) kędzierzawka liści brzoskwiń (Taphrina deformans),

f) werticilioza (Verticillium spp.);

4) choroby wirusowe i wirusopodobne:

a) karłowatość śliwy (Prune dwarf virus),

b) nekrotyczna plamistość pierścieniowa wiśni (Prunus necrotic ringspot virus).

11. Wiśnia (Prunus cerasus L.), czereśnia (Prunus avium (L.) L.)

1) szkodniki:

a) czerniec ciemny (Capnodis tenebrionis),

b) guzaki (Meloidogyne spp.),

c) tarczniki (Quadraspidiotus perniciosus, Epidiaspis leperii, Pseudaulacaspis pentagona i inne);

2) choroby bakteryjne:

a) guzowatość korzeni (Agrobacterium tumefaciens),

b) rak bakteryjny drzew pestkowych (Pseudomonas syringae pv. syringae, Pseudomonas syringae pv. mors prunorum);

3) choroby grzybowe:

a) opieńka miodowa (Armillariella mellea),

b) srebrzystość liści (Chondrostereum purpureum),

c) rak drzew owocowych (Nectria galligena),

d) biała plamistość korzeni (Rosellinia necatrix),

e) werticilioza (Verticillium spp.);

4) choroby wirusowe i wirusopodobne:

a) karłowatość śliwy (Prune dwarf virus),

b) nekrotyczna plamistość pierścieniowa wiśni (Prunus necrotic ringspot virus).

12. Porzeczki, agrest (Ribes spp. L.)

1) szkodniki:

a) węgorki (Apchelenchoides spp.),

b) wielkopąkowiec porzeczkowy (Cecidophyopsis ribis);

2) choroby bakteryjne: guzowatość korzeni (Agrobacterium tumefaciens);

3) choroby grzybowe:

a) opieńka miodowa (Armillariella mellea),

b) gruzłek cynobrowy (Nectria cinnabarina),

c) biała zgnilizna korzeni (Rosellinia necatrix),

d) werticilioza (Verticillium spp.);

4) choroby wirusowe i wirusopodobne: rewersja porzeczki czarnej (Black currant reversion, Black currant infectious variegation agent).

13. Malina, jeżyna (Rubus spp. L.)

1) szkodniki: szpeciel jeżynowiec (Aceria essigi);

2) choroby bakteryjne:

a) włosowatość korzeni (Agrobacterium rhizogenes),

b) guzowatość korzeni (Agrobacterium tumefaciens),

c) staśmienie łodyg (Rhodococcus fascians);

3) choroby grzybowe:

a) opieńka miodowa (Armillariella mellea),

b) zamieranie pędów malin (Didymella applanata),

c) mączniak rzekomy maliny (Peronospora rubi),

d) zgnilizna korzeni malin (Phytophthora fragariae var. rubi),

e) werticilioza (Verticillium spp.);

4) choroby wirusowe i wirusopodobne:

a) krzaczasta karłowatość maliny (Raspberry bushy dwarf virus),

b) kędzierzawka maliny (Raspberry leaf curl virus).

14. Borówka, żurawina (Vaccinium spp. L.)

1) szkodniki:

a) pryszczarek borówkowiec (Dasyneura vaccinii),

b) szpeciel pączkowy (Acalitus vaccinii);

2) choroby grzybowe:

a) zgorzel pędów borówki (Godronia cassandrae),

b) zgnilizna korzeni (Phytophthora spp.);

3) wirusy i patogeny wirusopodobne: fitoplazma miotlastości borówki (Blueberry witches broom phytoplasma).

15. Dodatkowe wymagania dla roślin cytrusowych:

1) materiał powinien pochodzić z materiału wyjściowego, który został skontrolowany i uznany za niewykazujący objawów chorób wirusów i wirusopodobnych;

2) materiał powinien zostać poddany indywidualnemu badaniu z użyciem metod do wykrywania takich wirusów i patogenów wirusopodobnych lub chorób i zostać uznany za wolny od nich;

3) materiał powinien być skontrolowany i zostać uznany za wolny od takich wirusów i patogenów wirusopodobnych lub chorób od ostatniego cyklu wegetacyjnego;

4) materiał powinien zostać zaszczepiony na podkładki inne niż podatne na wiroidy - w przypadku szczepienia.

D. Wymagania dotyczące wytwarzania i jakości materiału rozmnożeniowego winorośli

I. Wytwarzanie

1. Izolacja przestrzenna: mateczniki i szkółki winorośli powinny być położone w odległości nie mniejszej niż 10 m od dziko rosnących lub roślin uprawnych z rodzaju Vitis.

2. Czystość gatunkowa i odmianowa:

1) wymagana jest pełna czystość gatunkowa i odmianowa;

2) sadzonki mogą być roślinami własnokorzeniowymi lub szczepionymi na podkładkach odpornych na filokserę winiec.

3. Wiek:

1) mateczniki winorośli utrzymuje się do 15 lat;

2) w szkółkach sadzonki winorośli nie mogą być starsze niż trzyletnie.

4. Zdrowotność

Rośliny mateczne i sadzonki winorośli powinny być:

1) wolne od organizmów kwarantannowych;

2) praktycznie wolne od organizmów, które mogą obniżyć jakość materiału szkółkarskiego - na podstawie wizualnej oceny.

II. Jakość

Materiał rozmnożeniowy winorośli powinien spełniać wymagania jakościowe:

1) pełnej czystości gatunkowej i odmianowej;

2) właściwego wyglądu gatunku i odmiany;

3) być praktycznie wolny od uszkodzeń fizycznych, mechanicznych lub chemicznych;

4) być praktycznie wolny od wad wynikających z rozmnażania, które mogłyby obniżyć jego przydatność i jakość;

5) być przygotowany w postaci jednorodnych partii;

6) być wolny od organizmów kwarantannowych;

7) być praktycznie wolny od organizmów, które mogą obniżyć jakość materiału szkółkarskiego;

8) powinien mieć minimum jeden pęd o długości co najmniej 20 cm, mierząc od nasady do jego wierzchołka;

9) średnica pędu powinna wynosić nie mniej niż 4 mm, mierząc u nasady pędu;

10) powinien mieć:

a) nie mniej niż 3 korzenie szkieletowe o długości co najmniej 15 cm albo

b) wiązkę korzeni drobnych nie krótszych niż 6 cm - dla sadzonek wykopywanych ze szkółki, albo

c) korzenie przerastające całą objętość gleby - dla sadzonek utrzymywanych w pojemnikach.

______

¹⁾ Wiek - liczba lat wyrażona liczbą okresów wegetacyjnych, dla:

a) plantacji - liczona od roku założenia (posadzenia) plantacji,

b) drzewek - liczona od roku szczepienia (okulizacji) podkładki zrazem (oczkiem) odmiany, wstawki, skarlającej, pośredniej lub przewodniej,

c) drzewek własnokorzeniowych - liczona jest od roku ukazania się u nasady pędu korzeni przybyszowych,

d) podkładek:

- generatywnych - liczona od roku skiełkowania nasion,

- wegetatywnych - liczona od roku ukazania się części nadziemnej podkładki i korzeni przybyszowych,

- z kultur in vitro - liczona od roku wysadzenia ukorzenionych roślin pod osłony lub na pole,

e) roślin w formie krzaczastej - liczona od roku posadzenia sadzonek pod osłonami lub na polu,

f) roślin w formie piennej - liczona od rozpoczęcia wzrostu pędów z przyjętych zrazów lub oczek odmiany.

²⁾ Materiał wolny od wirusów (ww, vf): materiał szkółkarski, który został poddany testowaniu i uznany za wolny od wirusów dla poszczególnych gatunków w tym statusie; jest to również materiał otrzymany bezpośrednio z materiału wolnego od wirusów produkowany lub utrzymywany, w określonej liczbie pokoleń, w warunkach gwarantujących niewystąpienie infekcji.

ZAŁĄCZNIK Nr 10

WYKAZ GATUNKÓW ROŚLIN ROLNICZYCH, KTÓRYCH MATERIAŁ SIEWNY MOŻE BYĆ UZNANY ZA MATERIAŁ SIEWNY KATEGORII HANDLOWY

Lp.	Nazwa polska	Nazwa łacińska
1	Esparceta siewna	Onobrychis sativa L.
2	Gorczyca czarna	Brassica nigra L.
3	Wiechlina roczna	Poa annua L.
4	Wyka pannońska	Vicia pannonica L.
5	Mozga Hardinga	Phalaris aquatica L.
6	Kozieradka pospolita (koniczyna grecka)	Trigonella foenum-graecum L.
7	Siekiernica włoska	Hedysarum coronarium L.
8	Cynodon palczasty	Cynodon dactylon (L.) Pers.
9	Orzech ziemny	Arachis hypogaea L.

1 § 10a dodany przez § 1 pkt 1 rozporządzenia z dnia 18 marca 2010 r. (Dz.U.10.56.347) zmieniającego nin. rozporządzenie z dniem 23 kwietnia 2010 r.

2 § 19a dodany przez § 1 rozporządzenia z dnia 19 czerwca 2007 r. (Dz.U.07.110.764) zmieniającego nin. rozporządzenie z dniem 25 czerwca 2007 r.

3 Załącznik nr 2:

- zmieniony przez § 1 rozporządzenia z dnia 24 września 2007 r. (Dz.U.07.189.1358) zmieniającego nin. rozporządzenie z dniem 31 października 2007 r.

- zmieniony przez § 1 pkt 1 rozporządzenia z dnia 29 września 2008 r. (Dz.U.08.183.1136) zmieniającego nin. rozporządzenie z dniem 31 października 2008 r.

- zmieniony przez § 1 pkt 1 rozporządzenia z dnia 31 lipca 2009 r. (Dz.U.09.130.1071) zmieniającego nin. rozporządzenie z dniem 26 sierpnia 2009 r.

- zmieniony przez § 1 pkt 1 rozporządzenia z dnia 14 września 2010 r. (Dz.U.10.183.1230) zmieniającego nin. rozporządzenie z dniem 16 października 2010 r.

4 Załącznik nr 3 zmieniony przez § 1 pkt 2 rozporządzenia z dnia 18 marca 2010 r. (Dz.U.10.56.347) zmieniającego nin. rozporządzenie z dniem 23 kwietnia 2010 r.

5 Załącznik nr 4 zmieniony przez § 1 pkt 1 rozporządzenia z dnia 29 stycznia 2008 r. (Dz.U.08.29.173) zmieniającego nin. rozporządzenie z dniem 1 marca 2008 r.

6 Załącznik nr 5:

- zmieniony przez § 1 pkt 2 rozporządzenia z dnia 31 lipca 2009 r. (Dz.U.09.130.1071) zmieniającego nin. rozporządzenie z dniem 26 sierpnia 2009 r.

- zmieniony przez § 1 pkt 2 rozporządzenia z dnia 14 września 2010 r. (Dz.U.10.183.1230) zmieniającego nin. rozporządzenie z dniem 16 października 2010 r.

7 Załącznik nr 6:

- zmieniony przez § 1 pkt 2 rozporządzenia z dnia 29 stycznia 2008 r. (Dz.U.08.29.173) zmieniającego nin. rozporządzenie z dniem 1 marca 2008 r.

- zmieniony przez § 1 pkt 3 rozporządzenia z dnia 14 września 2010 r. (Dz.U.10.183.1230) zmieniającego nin. rozporządzenie z dniem 16 października 2010 r.

8 Załącznik nr 7 zmieniony przez § 1 pkt 7 rozporządzenia z dnia 29 stycznia 2008 r. (Dz.U.08.29.173) zmieniającego nin. rozporządzenie z dniem 1 marca 2008 r.

9 Załącznik nr 9 zmieniony przez § 1 pkt 2 rozporządzenia z dnia 29 września 2008 r. (Dz.U.08.183.1136) zmieniającego nin. rozporządzenie z dniem 31 października 2008 r.

Szczegółowe wymagania dotyczące wytwarzania i jakości materiału siewnego.

Dz.U.2007.29.189

ROZPORZĄDZENIE MINISTRA ROLNICTWA I ROZWOJU WSI1) z dnia 1 lutego 2007 r. w sprawie szczegółowych wymagań dotyczących wytwarzania i jakości materiału siewnego2)

ZAŁĄCZNIKI

ZAŁĄCZNIK Nr 1 OPIS KATEGORII I STOPNI KWALIFIKACJI MATERIAŁU SIEWNEGO DLA POSZCZEGÓLNYCH GRUP ROŚLIN

ZAŁĄCZNIK Nr 2 3 SZCZEGÓŁOWE WYMAGANIA DOTYCZĄCE WYTWARZANIA MATERIAŁU SIEWNEGO ROŚLIN ROLNICZYCH, Z WYŁĄCZENIEM ZIEMNIAKA, DLA POSZCZEGÓLNYCH GATUNKÓW LUB GRUP ROŚLIN

I. Wymagania dotyczące wytwarzania materiału siewnego roślin zbożowych

II. Wymagania dotyczące wytwarzania materiału siewnego roślin pastewnych

III. Wymagania dotyczące wytwarzania materiału siewnego roślin oleistych i włóknistych

IV. Wymagania dotyczące wytwarzania materiału siewnego buraka cukrowego i pastewnego

ZAŁĄCZNIK Nr 3 4 SZCZEGÓŁOWE WYMAGANIA DOTYCZĄCE WYTWARZANIA I JAKOŚCI MATERIAŁU SIEWNEGO (SADZENIAKÓW) ZIEMNIAKA

ZAŁĄCZNIK Nr 4 5 SZCZEGÓŁOWE WYMAGANIA DOTYCZĄCE WYTWARZANIA MATERIAŁU SIEWNEGO ROŚLIN WARZYWNYCH

I. Warzywa kapustne i rzepowate

II. Warzywa cebulowe

III. Warzywa korzeniowe

IV. Warzywa dyniowate

V. Warzywa psiankowate

VI. Warzywa strączkowe

VII. Warzywa liściowe

VIII. Warzywa pozostałe

IX. Cykoria korzeniowa1)

ZAŁĄCZNIK Nr 5 6 Tabela 1

ZAŁĄCZNIK Nr 6 7 DOPUSZCZALNA WIELKOŚĆ PARTII W OBROCIE ORAZ SZCZEGÓŁOWE WYMAGANIA JAKOŚCIOWE DLA MATERIAŁU SIEWNEGO ROŚLIN WARZYWNYCH

ZAŁĄCZNIK Nr 7 8 SZCZEGÓŁOWE WYMAGANIA DOTYCZĄCE WYTWARZANIA I JAKOŚCI MATERIAŁU ROZMNOŻENIOWEGO I NASADZENIOWEGO ROŚLIN WARZYWNYCH

ZAŁĄCZNIK Nr 8 SZCZEGÓŁOWE WYMAGANIA DOTYCZĄCE WYTWARZANIA I JAKOŚCI MATERIAŁU ROZMNOŻENIOWEGO I NASADZENIOWEGO ROŚLIN OZDOBNYCH

ZAŁĄCZNIK Nr 9 9 SZCZEGÓŁOWE WYMAGANIA DOTYCZĄCE WYTWARZANIA I JAKOŚCI MATERIAŁU SZKÓŁKARSKIEGO ROŚLIN SADOWNICZYCH I WINOROŚLI

ZAŁĄCZNIK Nr 10 WYKAZ GATUNKÓW ROŚLIN ROLNICZYCH, KTÓRYCH MATERIAŁ SIEWNY MOŻE BYĆ UZNANY ZA MATERIAŁ SIEWNY KATEGORII HANDLOWY

Dokumenty powiązane

Akty prawne liczba obiektów na liście: (20)

Akty zmieniające liczba obiektów na liście: (2)

Podstawa prawna liczba obiektów na liście: (2)

Akty implementowane liczba obiektów na liście: (13)

Akty uchylające liczba obiektów na liście: (1)

Akty uchylane liczba obiektów na liście: (1)

Akty zastępujące liczba obiektów na liście: (1)

Orzeczenia i pisma urzędowe liczba obiektów na liście: (80)

Orzeczenia sądów liczba obiektów na liście: (80)

ROZPORZĄDZENIE

MINISTRA ROLNICTWA I ROZWOJU WSI¹⁾

z dnia 1 lutego 2007 r.

w sprawie szczegółowych wymagań dotyczących wytwarzania i jakości materiału siewnego²⁾

ZAŁĄCZNIK Nr 1

OPIS KATEGORII I STOPNI KWALIFIKACJI MATERIAŁU SIEWNEGO DLA POSZCZEGÓLNYCH GRUP ROŚLIN

ZAŁĄCZNIK Nr 2

3 SZCZEGÓŁOWE WYMAGANIA DOTYCZĄCE WYTWARZANIA MATERIAŁU SIEWNEGO ROŚLIN ROLNICZYCH, Z WYŁĄCZENIEM ZIEMNIAKA, DLA POSZCZEGÓLNYCH GATUNKÓW LUB GRUP ROŚLIN

I.

Wymagania dotyczące wytwarzania materiału siewnego roślin zbożowych

II.

Wymagania dotyczące wytwarzania materiału siewnego roślin pastewnych

III.

Wymagania dotyczące wytwarzania materiału siewnego roślin oleistych i włóknistych

IV.

Wymagania dotyczące wytwarzania materiału siewnego buraka cukrowego i pastewnego

ZAŁĄCZNIK Nr 3

4 SZCZEGÓŁOWE WYMAGANIA DOTYCZĄCE WYTWARZANIA I JAKOŚCI MATERIAŁU SIEWNEGO (SADZENIAKÓW) ZIEMNIAKA

ZAŁĄCZNIK Nr 4

5 SZCZEGÓŁOWE WYMAGANIA DOTYCZĄCE WYTWARZANIA MATERIAŁU SIEWNEGO ROŚLIN WARZYWNYCH

I.

Warzywa kapustne i rzepowate

II.

Warzywa cebulowe

III.

Warzywa korzeniowe

IV.

Warzywa dyniowate

V.

Warzywa psiankowate

VI.

Warzywa strączkowe

VII.

Warzywa liściowe

VIII.

Warzywa pozostałe

IX.

Cykoria korzeniowa1)

ZAŁĄCZNIK Nr 5

6 Tabela 1

ZAŁĄCZNIK Nr 6

7 DOPUSZCZALNA WIELKOŚĆ PARTII W OBROCIE ORAZ SZCZEGÓŁOWE WYMAGANIA JAKOŚCIOWE DLA MATERIAŁU SIEWNEGO ROŚLIN WARZYWNYCH

ZAŁĄCZNIK Nr 7

8 SZCZEGÓŁOWE WYMAGANIA DOTYCZĄCE WYTWARZANIA I JAKOŚCI MATERIAŁU ROZMNOŻENIOWEGO I NASADZENIOWEGO ROŚLIN WARZYWNYCH

ZAŁĄCZNIK Nr 8

SZCZEGÓŁOWE WYMAGANIA DOTYCZĄCE WYTWARZANIA I JAKOŚCI MATERIAŁU ROZMNOŻENIOWEGO I NASADZENIOWEGO ROŚLIN OZDOBNYCH

ZAŁĄCZNIK Nr 9

9 SZCZEGÓŁOWE WYMAGANIA DOTYCZĄCE WYTWARZANIA I JAKOŚCI MATERIAŁU SZKÓŁKARSKIEGO ROŚLIN SADOWNICZYCH I WINOROŚLI

ZAŁĄCZNIK Nr 10

WYKAZ GATUNKÓW ROŚLIN ROLNICZYCH, KTÓRYCH MATERIAŁ SIEWNY MOŻE BYĆ UZNANY ZA MATERIAŁ SIEWNY KATEGORII HANDLOWY